生物电化学系统中微生物电子传递的研究进展

Development of Energy Science

November 2014, Volume 2, Issue 4, PP.39-46

Research Advances in Microbial Electron

Transfer of Bio-electrochemical System

Yunshu Zhang, Qingliang Zhao #, Wei Li

School of Municipal and Environmental Engineering, Harbin Institute of Technology, Harbin 150090, China

Abstract

Bio-electrochemical system (BES) was an emerging biomass-energy recovery technology based on electricigens electron transfer (EET), which was applied to recover electric energy (e.g. microbial fuel cell, MFC) and resources (such as hydrogen and methane) and to enhance the removal of heavy metals and refractory organic pollutants (e.g. POPs). The process of electron transfer to the electrode was identified as the key process in such a BES system. In this paper, the recent research achievements about EET both at home and abroad were analyzed and summarized, and the electricigen diversity, the electron transfer pathways and study methods were systematically presented. Finally, the direction of EET research was pointed out.

Keywords: Bio-electrochemical System; Microbial Fuel Cell; Electricigens; Electricigen Electron Transfer

生物电化学系统中微生物电子传递的研究进展*

张云澍，赵庆良，李伟

哈尔滨工业大学市政环境工程学院，黑龙江哈尔滨 150090 摘要：生物电化学系统（bio-electrochemical system ，BES ）是一种新兴的以产电微生物电子传递（EET ）为基础的生物质能源回收技术，可用于电能（如微生物燃料电池）和资源回收（包括氢气和甲烷等），此外还可用于强化重金属与难降解有机污染物（如POPs ）的去除，而其中产电微生物将产生的电子传递到电极是BES 的重要过程。本文分析总结了近年来国内外学者在EET 方面的研究成果，系统地介绍了产电微生物的多样性、EET 的途径和研究电子传递的方法，在此基础上指明了EET 研究的发展方向。

关键词：生物电化学系统；微生物燃料电池；产电微生物；产电微生物电子传递

引言

生物电化学系统（bioelectrochemical system，BES ）近年来在环境和能源领域受到广泛的关注。BES 是微生物燃料电池（Microbial Fuel Cell，MFC ）研究的拓展，MFC 的发现最早追溯到上个世纪初，英国的植物学家Potter 在进行厌氧培养时发现可以产生开路电压和电流，拉开了微生物产电研究的序幕[1]。随着化石燃料短缺带来的能源危机，生物质能源作为可再生能源逐渐受到人们的重视。到了20世纪中叶，针对微生物产电的研究才逐渐升温，将微生物产电和燃料电池技术相结合，构建了MFC 系统。近几年，MFC 从产电研究逐渐过渡到生物质资源化的应用方面，BES 应运而生。研究发现，通过BES ，CH 4[2]、H 2[3]等高附加值生物能源的合成效率显著提高；BES 能够有效提高重金属的还原去除，如U(Ⅵ) [4]、Cr(Ⅵ) [5]等；BES 可以应用于难降解有机污染物的去除，如石油烃[6]、多氯联苯和硝基苯等[7]；BES 应用于脱盐的研究，发现BES 可以有效地去除溶液中的阴、阳离子[8]。随着对BES 研究的逐渐深入，BES 的应用前景会更加广阔。其中电子传递过程是BES 研究的重要理论基础，因此对电子传递过程的深入研究是十分有意义的。

*基金资助：本研究得到国家自然科技基金支持资助（51378144）。

1 产电微生物

产电微生物是BES 电子传递过程中最主要的组成，它将底物氧化产生电子并传递到电极上，完成电子传递。关于产电微生物的研究始于两类异化的金属还原菌Shewanella 和Geobactor ，这两种微生物可以利用细胞外的金属离子作为电子受体进行呼吸，维持自身代谢。至今为止这两株微生物的全基因测序已经完成

[9,10]。随着分子生物学的迅猛发展，对不同系统中分离的电极生物膜进行群落结构统计分析，总结发现目前

产电微生物底物利用的广谱性对BES 的应用十分重要，Chaudhuri 等人发现Rhodoferax ferrireducens 可以已分离的产电微生物主要源于Proteobacteria , Firmicutes, Acidobacteria , Bacteroidetes 等门。高效率地利用葡萄糖、乳酸、果糖、蔗糖等较为复杂的有机物进行产电，并且具有很高的库伦效率（80%）

[11]；纯菌接种的MFC 的功率密度通常低于混合菌种接种的MFC ，Xing 等人分离出一株新的产电菌Rhodopseudomonas palustris DX-1，它可以高效地氧化乙酸、乳酸和乙醇进行产电，并且通过对比试验发现其与混合菌接种的 MFC 具有相当的功率密度[12]；胞外产电菌通常为严格厌氧的微生物，华南师范大学的Zhang 等人分离出一株兼性厌氧的产电菌Klebsiella pneumoniae ，它以葡萄糖为底物，对培养环境要求低，具有很高的应用前景[13]；Liu 等人发现，BES 中的微生物对环境的变化十分敏感，不同温度环境下电极生物膜微生物群落结构的区别主要体现在Deltaproteobacteria 和Gammaproteobacteria 的分布，且低温中的Simplicispira psychrophila和Psychrophilus 明显增多[14]；Geopsychrobacter electrodiphilus和Thermincola sp.分别是两株耐寒和耐热的产电菌，这两种微生物的发现使得BES 的应用温度范围得以扩宽[15,16]。

根据BES 应用领域的不同，其阳极生物膜上的微生物多样性体现的更明显。Zhang 等发现在MEC 中Firmicutes 的比例很高，猜测其在MEC 的电子传递中起到重要的作用[17]。M. Lenin 等人发现通过暗发酵的污水中丰富的可溶酸中间体，包括醋酸、丙酸盐和丁酸盐可以为MEC 提供碳源，并通过分子生物学技术证明γ-proteobacteria (50%)，Bacilli (25%) 和Clostridia (25%)为阳极的优势微生物[18]。Sacco 等人利用美国拉普拉塔河河的岸边的底泥作为阳极的主要底物，构建了沉积物MFC (SMFC)。提取石墨电极表面生物膜的DNA 分析，发现膜中的微生物群落组成主要为Shewanella sp .、Pantoea sp .、Pseudoalteromonas sp. 和Antarctic bacteria R-11381[19]。

近年来电缆细菌的发现为产电微生物的发现开拓的新的领域。Pfeffer 等人在SMFC 中发现，不同于纳米导线，即使沉淀层和覆水层之间的距离在1cm 以上，氧气在覆水层还原伴随硫化物在沉淀层氧化这一过程会也产生电流。为了探究其产生原因，在沉淀层中的发现一株Desulfobulbaceae 丝状真菌，实验证实了Desulfobulbaceae 的电子传输是通过低氧区的连贯的电子通道，而绝非传统的利用电子中介体或纳米导线以及细胞色素C 等进行电子的传输，实验分析发现剪断沉积层中的丝状物后沉积层中的氧气的消耗率逐渐增加。证明在丝状真菌存在的时候电子可以通过丝状真菌从下层传递到上层使得上层的氧气还原，而当剪断之后电子无法传到上层，因此下层氧气的消耗要比剪断之前高[20]。

2 电子传递

BES 的运行过程就是电子从电子供体通过一系列的电子传递，直到最终电子受体。电子传递分为阳极电子传递和阴极电子传递。如何进行高效的电子传递和提高电子的利用率有助于提高BES 的电活性和库伦效率。因此深入研究电子传递的过程在整个BES 的发展历程中显得尤为重要。

当可溶性电子受体被耗尽后，微生物会通过胞外电子传递将电子传递到不可溶的电子受体上，称之为胞外电子传递（EET ）。

BES 的电子来源于底物在微生物细胞内的氧化，形成电子需要从微生物细胞膜的内膜传递到阳极电极上，这个过程是整个BES 反应中主要的限制因素之一。

近些年来，很多学者对EET 进行了深入的研究，逐渐概况了两种EET 机制即直接电子传递（DET ）和间接电子传递（IET ），具体过程如图1所示。但相关研究主要局限于模式微生物shewanella oneidensis 和

图1 BES主要的电子传递方式

2.1 直接电子传递（DET ）

其中DET 又分为利用膜束缚性（或附属性）酶复合物（主要是细胞色素C ）参与，和利用导电性的纤毛和其类似结构进行电子传递。

细胞在和电活性表面进行接触时，会在膜结合的电活性化合物的作用下发生电子传递，而不同属的微生物，其将醌/甲基萘醌池中的电子传递到细胞外膜上的电活性氧化还原蛋白的过程也各不相同，很多文献对细胞色素C 进行研究，并证明它定位在细胞外膜上并作为电子穿梭的通道将电子传递到固相的电极中。

Shewanella oneidensis MR-1细胞膜结合蛋白CymA 为四亚铁红素，接受醌/甲基萘醌池的电子并还原周质还原蛋白。后续报道这种结合蛋白可以间接参与不同的电子受体的呼吸反应，如Fe 3+、Mn 4+和硝酸盐等，并证明了细胞外的电子传递链和质子穿透内膜的过程是独立的。周质还原蛋白主要由MtrA 、MtrB 和MtrC 构成，而MtrD 、MtrE 、MtrF 分别是MtrA 、MtrB 和MtrC 的同系物。MtrA 可以作为连接蛋白连接CymA 和MtrB 。MtrA 与MtrB 有微弱的关联，锚定在细胞外膜的周质空间内；MtrC 和OmcA 二聚体形成复合物，并被证明是电子向胞外电子受体转移的最重要的氧化还原酶。得利于蛋白质组学的发展，利用生物信息学和蛋白结晶的方法获得了MtrA 、MtrB 和MtrC 的空间结构，证明MtrB 形成一个“套筒”包裹MtrA 和MtrC ，使得电子可以从MtrA 传递到MtrC 进行外源电子受体呼吸[21]。

而在Geobactor sulfurreducens 中，镶在内膜上的二亚铁血红色素MacA 从醌/甲基醌池中得到电子[22]。MacA 能够继续还原细胞膜周质三亚铁血红色素PpcA ，PpcA 聚合呈链状，像周质纳米导线一样将内膜电子传递到外膜的氧化还原酶上[23]。

针对不同的电子受体，细胞色素C 家族中基因会发生差异性表达，Aklujkar 等人发现Geobactor sulfurreducens 细胞的外膜氧化还原酶OmcS 基因在Fe 3+和Mn 4+作为最终电子受体的环境中表达显著提高；OmcA ，OmcE ，OmcH ，OmcL ，OmcN ，OmcO 和OmcP 这些外膜细胞色素基因在Fe 3+作为电子受体的氧化还原反应中表达提高；而外膜细胞色素OmaB/OmaC，OmcB 和OmcZ 以及OmpC 在发生Mn 4+作为电子受体的氧化还原反应中基因表达提高。进一步分析发现MacA ，OmcB ，OmcF ，OmcG ，OmcH ，OmcI ，OmcJ ，OmcM ，OmcV 这些细胞色素仅在Fe 3+的氧化还原中起作用而与Mn 4+的氧化还原反应无关[24]。Osorio 等对硫还原细菌Acidithiobacillus ferrooxidans 的电子传递过程进行研究，通过基因产物浓度、qPCR 和蛋白质组学等分析方法，证明了异种的二氧化硫还原酶（Hdr ）将电子送入内膜周质的醌池中，而后电子从醌池中传递给泛醌-细胞色素C 还原酶（Pet ），再由Pet 传递给细胞色素（Cyc ）[25]。尽管很多研究已经证明了细胞色素C 在固相受体的电子传递中起着重要的作用但是对于这个蛋白家族还存在很多冗余的功能。

关于纳米导线的研究是近几年才兴起的，在2005年，Reguera 等发现G. metallireducens 能够附着于阳极表面，并通过胞外伞毛状的“纳米导线”进行电子传递[26]，这种纳米导线与Fe(Ⅲ) 氧化物直接接触，将Fe(Ⅲ) 还原成Fe(Ⅱ) ，而不能产生纳米导线的突变菌株不具有Fe(Ⅲ) 的还原性，并利用传导探针结合原子力显微镜揭示了G. metallireducens的周生纳米导线具有良好的导电能力[27]。

对于纳米导线的组成研究正在进行中，基本认定其成分是混入菌毛蛋白组装的细胞色素。Gorby 等发现外膜细胞色素MtrC 和OmcA 缺陷的菌株失去菌毛的导电性[28]；Bouhenni 等根据纤毛、鞭毛的基因构建Shewanella oneidensis MR-1野生型和△gspG 、△DpilM-Q 、△mshH-Q 、△flg 、△pilM-Q mshH-Q 六种缺陷型菌株。对七株菌进行产电分析，发现其中flg （鞭毛）缺陷型菌株的产电能力最高，其次是pilM-Q 缺陷型菌株、而后依次是是野生型、mshH-Q 缺陷型菌株、pilM-Q 、mshH-Q 缺陷型菌株和mtrC/omcA缺陷型菌株。说明鞭毛在胞外电子传递中起阻碍作用，pilM-Q 这些基因在胞外电子传递过程中并没有作用，而mtrC/omcA和mshH-Q 在胞外电子传递中起着重要的作用[29]；Lovley 在长距离电子传递实验中，发现pilA 过表达的菌株在整个微生物种群中占支配地位，并且在以电极为电子受体时pilA 的表达高于以三价铁为电子受体。而敲除pilA 后会严重影响产电能力。证明菌毛在长距离电子传递中起到重要的作用[30]。研究发现，光合藻青菌、Synechocystis PCC6803 和嗜温发酵细菌 Pelotomaculum thermopropionicum 同样能够产生纳米导线，这揭示了具有电传导作用的附属物并不是异化金属还原菌的唯一产物，它代表了常见细菌为了传导电子和分配能量而采用的一种策略。

2.2 间接电子传递（IET ）

IET 即电活性微生物通过可溶性的内源氧化还原中介体进行胞外电子传递。已知的内源电子中介体已经有很多了，包括吩嗪、黄素、核黄素、醌类物质、黑色素等。

Rabaey 等分离得到一株能够产生内源电子中介体的微生物Pseudomonas aeruginosa strain KRP1。该菌通过电子中介体绿脓菌青素和吩嗪-1-酰胺向阳极进行电子传递。阳极的存在促进了脓菌青素的分泌。合成绿脓菌青素和吩嗪-1-酰胺缺陷型菌株，不能传递电子，相比于野生型只产生了5%的能量。加入绿脓菌素后，输出功率逐渐恢复到野生型的50%。绿脓青菌素作为电子中介体具有一定的广谱性。通过计算，MFC 中的绿脓菌青素被微生物回收再利用的速率是大约每天11次[31]。

Shewanella sp. 可以利用内源性黄素作为电子中介体进行电子穿梭。Okamoto 等人发现黄素单核甘酸为MtrC 上绑定的辅因子，并在不同的氧化还原电位下形成半醌加速电子传递。利用差示脉冲伏安法（DPV ）发现不同的电位其黄素的反应峰值不同，说明黄素还参加其他的传递形式，利用OmcA 缺陷型菌株进行DPV 实验发现在加入黄素后对缺陷型的产电影响很小，而野生型的产电效率会提高很多，说明了黄素会与OmcA 联合加强电子传递[32]。

Teravest 和Rosenbaum 等人近期发现，间接电子传递是Shewanella oneidensis MR-1的主要电子传递方式，在阳极存在氧气的连续培养情况下，Shewanella oneidensis MR-1可以高效的生成黄素以进行电子传递，打破了阳极存在氧气会抑制电子传递的理论，因此BES 中电子传递是是多种代谢共同调控的复杂的生物行为，单纯运用电化学的思维去理解BES 的电子传递是片面的[33]。

2.3 阴极的电子传递

近年来MFC 功能不断扩展，生物阴极的不断开发，使得关于阴极电子传递的研究也逐渐升温。Castelle 等通过对阴极进行循环伏安实验发现图上的氧化还原峰值电压与单纯的细胞色素C 峰值电压基本一致，因此可以断定细胞色素C 在阴极胞外电子传递中起到重要的作用。生物阴极细胞色素C 接受阳极传递来的电子并参与很多反应，包括氧气在细胞膜表面的还原[34]。

如今阴极的应用逐渐成为了BES 的研究热点，关于阴极电子传递的研究势必会受到更广泛的关注。

3 研究电子传递的方法

3.1 电化学方法

电化学测量的目的是确定不同电极体系的电极界面的结构、界面上电荷和电势的分布，以及在界面上进行的电化学过程规律。电化学实验主要是通过在不同的测试条件下，对电极电势和电流分别进行控制和测量，并对其相互关系分析而实现。其中线性扫描伏安法、循环伏安法、脉冲伏安法是分析BES 电子传递过程的主要方法。其中循环伏安法的应用范围最为广泛。

微生物将分解底物产生的电子传递到电极上的过程包含一系列可逆和不可逆的氧化还原反应，当扫描电压临界反应的电位时，由于氧化还原反应的作用，形成了电子，产生了响应电流，使得电流激增，在图像上就会呈现出来一个氧化还原峰，随着扫描电位的变动，相应电流逐渐变化，并在最适合氧化还原反应发生的电位出现最高的响应电流形成峰。可以根据峰推测氧化还原反应的类型。

Liu 等将导电的碳纳米管水凝胶聚合壳聚糖附着在碳布上作为BES 的阳极电极，通过交流阻抗分析发现改良后的阳极具有更低的传荷内阻；通过循环伏安法证明了改良后的阳极具有更高的电活性，并证明了是由于改良后阳极表面具有更多的羟基和羰基结构，使得电子传递更容易进行[35]。

Alessandro 等利用循环伏安分析发现了发现Shewanella oneidensis 在电子传递过程中出现两个氧化还原反应，并证明一种是DET ，一种是MET 。其中细胞色素相关基因MtrC 和OmcA 是DET 的关键基因，而相关的纤毛和鞭毛基因pilM-Q 、mshH-Q 、pilM-Q 、mshH-Q 以及flg 也与DET 紧密相关。而MET 主要是Shewanella 细胞相关基因表达和分泌黄素和核黄素作为电子介体加强细胞膜与电极的电子传递[36]。

3.2 HPLC （高效液相色谱）

高效液相色谱即根据样品的极性使得在流动相和固定相中的分配系数不同，进而进行分离，利用高效液相色谱来检测产电微生物分泌的电子传递中介体进而分析电子传递过程。

S.oneidensis MR-1 可以分泌两种黄素，FMN 和核黄素。其中二者的含量随着电子受体的不同而改变，Wu 等人通过HPLC 发现其中加入氧化三甲胺（TMAO ）后FMN 和核黄素在细胞外的量明显高于其他的电子受体。说明TMAO 可以刺激黄素的分泌。当在水铁矿溶液中加入不同含量的TMAO 发现随着TMAO 的浓度的升高，铁还原的效率也明显升高，同时做了加入不同浓度的核黄素对铁还原的影响，其影响程度不是很高，说明加入TMAO 除了影响其黄素分泌，还影响着微生物的其他作用因此加速三价铁的还原[37]。

3.3 生物信息学

生物信息学的发展使得电子传递的研究更高效，通过指纹序列的提取、测序和比对可以得出该反应系统的微生物群落结构，进而根据已知的电子传递途径对该系统进行分析；基于Shewanella oneidensis MR-1和 Geobactor sulfurreducens 等模式产电微生物的全基因组已经测序完成，相关电子传递的基因也基于蛋白质组学和生物芯片的发展得以呈现，利用基因敲除技术可以获得相关基因缺陷型的产电微生物，根据缺陷型的产电能力与野生型进行对比，进而得出该敲除基因对微生物电子传递的影响；而如今更多的分子生物学技术活跃在电子传递机理的分析领域，使得分子生物学是当今电子传递机理分子的最主要工具。

4 结论和展望

BES 的电子传递研究多局限于两种模式产电微生物即Shewanella 和Geobactor 。但是近年来，越来越多的研究证明了胞外电子传递是微生物界普遍存在的一种代谢途径。不同条件的底物环境中微生物间存在着复杂的互作关系，单纯分析纯培养的电子传递过程已经无法满足当今BES 发展的需要。

近年来分子生物学蓬勃发展，宏基因组学、转录组学以及蛋白质组学为探寻微生物电子传递提供了技术上的支持。今后电子传递的探究应该从以下两个方面入手，即运用宏基因组和转录组技术得到目标环境中所

有微生物的遗传信息，并探寻BES 系统中产电微生物的分布及其相关基因的表达；利用蛋白质组学技术推测电子传递相关蛋白的结构，得出三维的电子传递结构图，利用生物物理手段探寻BES 电子传递的途径。

由于阴极电子受体不同，将会导致BES 阴极微生物具有多样性和电子传递方式迥异，而对阴极电子传递机制的认识还远不及阳极，所以针对BES 系统中生物阴极的研究将是热点方向之一。利用分子生物学技术可以宏观地得到在不同条件下、不同基因的表达，寻找到阴极电子传递的关键途径，阐明阴极的微生物与电极的相互作用机制，有目的地强化生物阴极的电化学活性。

总之，BES 中的电子传递是由微生物多种代谢途径共同控制的复杂过程，单纯利用电化学知识难以全面地掌握BES 的电子传递过程。利用分子生物学手段对BES 中电子传递途径进行基因水平的描述，以强化BES 的效能和应用范围，将是今后研究的重点方向。

致谢

感谢国家自然科学基金项目（51378144）对本课题研究的支持。

R EFERENCES

[1] Potter M.C. Electrical effects accompanying the decomposition of organic compounds [J]. Proceedings of the Royal Society of

London. Series B, Containing Papers of a Biological Character, 1911, 84(571): 260-276

[2] Shaoan Cheng, Defeng Xing, Douglas F. Cal,et al. Direct Biological Conversion of Electrical Current into Methane by

Electromethanogenesis[J]. Environ. Sci. Technol, 2009, 43 (10): 3953-3958

[3] Bruce E. Logan, Douglas Cal, Shaoan Cheng. Microbial Electrolysis Cells for High Yield Hydrogen Gas Production from Organic

Matter [J]. Environ. Sci. Technol., 2008, 42 (23): 8630-8640

[4] Roberto Orellana, Janet J Leavitt, Luis R Comolli, et al. U (VI) reduction by diverse outer surface c-type cytochromes of

Geobacter sulfurreducens[J]. Applied and environmental microbiology. 2013, 79(20): 6369-6374

[5] Zhongjian Li, Xingwang Zhang, Lecheng Lei. Electricity production during the treatment of real electroplating wastewater

containing Cr6+ using microbial fuel cell[J]. Process Biochemistry. 2008, 43(12): 1352-1358

[6] Liang B, Cheng H Y, Kong D Y, et al. Accelerated reduction of chlorinated nitroaromatic antibiotic chloramphenicol by

biocathode[J]. Environmental science & technology, 2013, 47(10): 5353-5361.

[7] Bin Liang, Hao-Yi Cheng, De-Yong Kong, et al. Accelerated reduction of chlorinated nitroaromatic antibiotic chloramphenicol by

biocathode[J]. Environmental science & technology. 2013, 47(10): 5353-5361

[8] Xi Chen, Xue Xia. Stacked Microbial Desalination Cells to Enhance Water Desalination Efficiency.[J] Environ. Sci. Technol.

2011, 45: 2465-2470

[9] Kelly P Nevin, Byoung-Chan Kim ，Richard H Glaven, et al. Anode biofilm transcriptomics reveals outer surface components

essential for high density current production in Geobacter sulfurreducens fuel cells. PLoS One. 2009, 4(5): e5628

[10] BA Methe, Karen E Nelson, JA Eisen, et a. Genome of Geobacter sulfurreducens: metal reduction in subsurface environments.

Science, 2003, 302(5652): 1967-1969

[11] Swades K Chaudhuri, Derek R Lovley. Electricity generation by direct oxidation of glucose in mediatorless microbial fuel cells,

Nature biotechnology. 2003, 21(10): 1229-1232

[12] Defeng Xing, Yi Zuo, Shaoan Cheng, et al, Electricity generation by Rhodopseudomonas palustris DX-1. Environmental science

& technology. 2008, 42(11): 4146-4151

[13] Lixia Zhang, Shungui Zhou, Li Zhuang, et al, Microbial fuel cell based on Klebsiella pneumonia biofilm, Electrochemistry

communications. 2008, 10(10): 1641-1643

[14] Lihong Liu, Olga Tsyganova, Duu-Jong Lee, et al. Anodic biofilm in single-chamber microbial fuel cells cultivated under different

temperatures, International Journal of Hydrogen Energy. 2012, 37(20): 15792-15800

[15] othinathan Deepika, Sundaram Meignanalakshmi, Wilson Richard Thilagaraj. A study on bioelectricity production by the

synergistic action of Bacillus tequilensis dmr-5 and Pseudomonas aeruginosa dmr-3 isolated from rumen fluid, American Journal of Environmental Sciences, 2013, 9(5): 424

[16] Christopher W Marshall, Harold D May. Electrochemical evidence of direct electrode reduction by a thermophilic Gram-positive

bacterium, Thermincola ferriacetica. Energy & Environmental Science. 2009, 2(6): 699-705

[17] Jingxin Zhang, Yaobin Zhang, Xie Quan, et al. Enhanced anaerobic digestion of organic contaminants containing diverse microbial

population by combined microbial electrolysis cell (MEC) and anaerobic reactor under Fe (III) reducing conditions. Bioresource technology. 2013, 136: 273-280

[18] M Lenin Babu, G Venkata Subhash, PN Sarma, et al. Bio-electrolytic conversion of acidogenic effluents to biohydrogen: An

integration strategy for higher substrate conversion and product recovery. Bioresource technology. 2013, 133: 322-331

[19] Natalia J Sacco, Eva LM Figuerola, Gabriela Pataccini, et al. Performance of planar and cylindrical carbon electrodes at

sedimentary microbial fuel cells. Bioresource technology. 2012, 126: 328-335

[20] Daniel A Lowy, Leonard M Tender, J Gregory Zeikus, et al, Harvesting energy from the marine sediment –water interface II:

kinetic activity of anode materials. Biosensors and Bioelectronics. 2006, 21(11): 2058-2063

[21] Thomas A Clarke, Marcus J Edwards, Andrew J Gates, et al. Structure of a bacterial cell surface decaheme electron conduit.

Proceedings of the National Academy of Sciences. 2011, 108(23): 9384-9389

[22] Teena Mehta, Maddalena V Coppi, Susan E Childers, et al. Outer membrane c-type cytochromes required for Fe (III) and Mn (IV)

oxide reduction in Geobacter sulfurreducens. Applied and environmental microbiology. 2005, 71(12): 8634-8641

[23] Pier-Luc Tremblay, Zarath M Summers, Richard H Glaven, et al. A c-type cytochrome and a transcriptional regulator responsible

for enhanced extracellular electron transfer in Geobacter sulfurreducens revealed by adaptive evolution. Environmental microbiology. 2011, 13(1): 13-23

[24] Muktak Aklujkar, Maddalena V Coppi, Ching Leang, et al, Proteins involved in electron transfer to Fe (III) and Mn (IV) oxides by

Geobacter sulfurreducens and Geobacter uraniireducens. Microbiology. 2013, 159(Pt 3): 515-535

[25] H éctor Osorio, Stefanie Mangold, Yann Denis, et al. Anaerobic sulfur metabolism coupled to dissimilatory iron reduction in the

extremophile Acidithiobacillus ferrooxidans. Applied and environmental microbiology, 2013, 79(7): 2172-2181

[26] Gemma Reguera, Kevin D McCarthy, Teena Mehta, et al. Extracellular electron transfer via microbial nanowires. Nature. 2005,

435(7045): 1098-1101

[27] Hanno Richter, Kelly P Nevin, Hongfei Jia, et al. Cyclic voltammetry of biofilms of wild type and mutant Geobacter

sulfurreducens on fuel cell anodes indicates possible roles of OmcB , OmcZ , type IV pili , and protons in extracellular electron transfer. Energy & Environmental Science. 2009, 2(5): 506-516

[28] Yuri A Gorby, Svetlana Yanina, Jeffrey S McLean, et al. Electrically conductive bacterial nanowires produced by Shewanella

oneidensis strain MR-1 and other microorganisms. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2006, 103(30):11358-11363

[29] Rachida A Bouhenni, Gary J Vora, Justin C Biffinger, et al. The Role of Shewanella oneidensis MR‐1 Outer Surface Structures

in Extracellular Electron Transfer. Electroanalysis. 2010, 22(7-8): 856-864

[30] Anna Klimes, Ashley E Franks, Richard H Glaven, et al. Production of pilus-like filaments in Geobacter sulfurreducens in the

absence of the type IV pilin protein PilA. FEMS microbiology letters. 2010, 310(1): 62-68

[31] Korneel Rabaey, Nico Boon, Steven D Siciliano, et al. Biofuel cells select for microbial consortia that self-mediate electron

transfer. Applied and Environmental Microbiology. 2004, 70(9): 5373-5382

[32] Akihiro Okamoto, Kazuhito Hashimoto, Kenneth H Nealson, et al. Rate enhancement of bacterial extracellular electron transport

involves bound flavin semiquinones. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2013, 110(19): 7856-7861

[33] Michaela A. TerAvest, Miriam A. Rosenbaum1, Nicholas J. Kotloski, et al. Oxygen allows Shewanella oneidensis MR-1 to

overcome mediator washout in a continuously fed bioelectrochemical system. Biotechnology and Bioengineering. 2014, 111(4): 692-699

[34] Cindy Castelle, Marianne Guiral, Guillaume Malarte, et al. A new iron-oxidizing/O2-reducing supercomplex spanning both inner

and outer membranes isolated from the extreme acidophile Acidithiobacillus ferrooxidans. Journal of biological chemistry. 2008,

283(38): 25803-25811

[35] XianWei Liu, YuXi Huang, XueFei Sun, et al. Conductive carbon nanotube hydrogel as a bioanode for enhancemicrobial

electrocatalysis. Environ. Sci. Technol. 2014, 6(11): 8515-8164

[36] Alessandro A Carmona-Martinez, Falk Harnisch, Lisa A Fitzgerald, et al. Cyclic voltammetric analysis of the electron transfer of

Shewanella oneidensis MR-1and nanofilament and cytochrome knock-out mutants. Bioelectrochemistry. 2011, 81(2): 74-80

[37] Chao Wu, Yuan-Yuan Cheng, Bing-Bing Li, et al. Electron acceptor dependence of electron shuttle secretion and extracellular

electron transfer by Shewanella oneidensis MR-1. Bioresource technology. 2013, 136: 711-714

【作者简介】

1张云澍（1988-），男，汉，博士研究生2赵庆良（1962-），男，汉，博士，教授，废水处理与资源

在读，主要从事微生物燃料电池和生物

质资源化相关研究。

2012.09-至今；哈尔滨工业大学环境科学

专业博士在读。

Email: [email protected]