胰蛋白酶水解对荞麦蛋白功能特性的影响_龚倩

244 2010, Vol. 31, No. 05

食品科学※生物工程

胰蛋白酶水解对荞麦蛋白功能特性的影响

龚 倩,唐传核,杨晓泉*

(华南理工大学轻工与食品学院,广东 广州 510640)

摘 要:研究胰蛋白酶水解及热处理对荞麦蛋白功能特性的影响。结果表明:随水解度的增大,蛋白质溶解性增大,表面疏水度降低,乳化性及乳化稳定性升高,起泡能力及泡沫稳定性下降。热处理使荞麦蛋白溶解性上升,表面疏水度增大,乳化性及乳化稳定性下降,起泡能力上升,并且加热处理可抑制由于水解度下降导致的泡沫稳定性降低的趋势。

关键词:荞麦蛋白;胰蛋白酶;热处理;功能特性

Effect of Trypsin Hydrolysis on Functional Properties of Buckwheat Protein Isolate

GONG Qian,TANG Chuan-he,YANG Xiao-quan*

(College of Light Industry and Food Sciences, South China University of Technology, Guangzhou 510640, China)Abstract :In this study, the effects of limited trypsin hydrolysis and heating treatment on physicochemical and functionalproperties of buchwheat protein isolate (BPI) were investigated. Results indicated that higher hydrolysis degree could result inthe improvement of protein solubility and emulsification stability, and the reduction of surface hydrophobicity, emulsifyingability and stability, and foaming ability and foam stability. However, heating treatment could lead to the increase of proteinsolubility, surface hydrophobicity and foaming ability, and the decrease of emulsifying activity and emulsifying stability.Moreover, heating treatment could inhibit the reduction trend of foam stability due to decreasing hydrolysis degree.Key words:buckwheat protein ;trypsin ;heating treatment;functional property

中图分类号:TQ936.1 文献标识码:A 文章编号:1002-6630(2010)05-0244-04

荞麦是具有较高营养价值和药用价值的作物,在每克荞麦种子中含有100~125mg 蛋白质,650~750mg 碳水化合物,20~25mg 脂肪以及20~25mg 无机盐[1]。此外荞麦中还含有铁、钙、磷、铜、锌、硼、碘、铂、钴等多种微量元素以及许多对某些慢性病具有医治作用的稀有成分如黄酮、类黄酮、植物甾醇、荞麦碱及硫氨素结合蛋白等。荞麦蛋白的组分同小麦粉差异较大,水溶性清蛋白的含量较高(31.8%~42.3%),谷蛋白含量次之(25.4%~26.1%),醇溶蛋白含量最低(1.7%~2.3%)。荞麦虽然被认为是假禾谷类作物,但高含量的清蛋白、球蛋白,低含量的醇溶蛋白、谷蛋白表明荞麦蛋白质与其他豆类植物蛋白更相似[2]。

目前国内对荞麦资源的利用仍处于起步阶段,市场上常见的荞麦制品为荞麦面、荞麦粥等粗加工而成的传统荞麦食品。这种传统的粗放型的加工方式不利于充分利用荞麦中的营养成分。为此,在传统加工技术的基础上,利用新的技术来改善传统荞麦食品品质是未来荞

收稿日期:2009-06-14

麦制品发展的趋势。本实验考察胰蛋白酶水解及热处理对荞麦蛋白功能特性的影响,以期为荞麦深加工提供指导。11.1

材料与方法

材料与设备

荞麦种子(甜荞麦) 市购;胰蛋白酶粉末(从猪胰脏中提取,酶比活力2×10-7~1×10-6U/mg) 诺维信公司。

高效液相色谱仪 美国Waters 公司;凯氏定氮仪上海洪纪仪器设备有限公司;冷冻干燥机 德国Christ 公司;冷冻离心机 日本Hitachi 公司;F93A 荧光分光光度计 上海思龙科学仪器有限公司;SP-721可见分光光度计 上海安锐自动化仪表有限公司;RW20 digital均质机 德国IKA 公司;数显pH 计、分析天平 德国Mettler Toledo公司;电动强力搅拌机 上海标本模型厂;电热恒温水浴锅 江苏金坛市宏华仪器有限公司;JB-1电磁搅拌机 上海雷磁新泾仪器有限公司;WH-1微型旋涡混合仪 上海沪西分析仪器有限公司。

作者简介:龚倩(1988—) ,女,硕士研究生,研究方向为植物蛋白工程。E-mail :[email protected]*—) E-mail :

※生物工程

1.21.2.1

方法

食品科学

2010, Vol. 31, No. 05245

值为7.0的10mmol/L磷酸缓冲液中,取10.0mL 置于25mL 量筒中,以10000r/min的速度均质2min 。起泡能力指混合后蛋白质溶液总体积的增加,起泡稳定性是指30min 后留存的泡沫的体积百分比。22.1

结果与分析

胰蛋白酶对荞麦蛋白的水解作用

2520D H /%

1510500

100

200

300时间/min

荞麦分离蛋白质量浓度2mg/100mL,pH8.0,酶与蛋白底物的比为1:200(m /m ) 。图1   胰蛋白酶酶解荞麦蛋白水解度-时间关系曲线

Fig.1 Time course of hydrolysis degree of BPI hydrolyzed with

trypsin

400

500

600

实验流程

荞麦种子 →粉碎→碱法提取蛋白质→荞麦分离蛋白    添加胰蛋白酶→↓

蛋白质水解产物←冻干←蛋白质水解液

1.2.1.1荞麦分离蛋白的提取

料液质量比1:10,pH8.0,恒温40℃搅拌提取1h ,6000r/min离心分离20min ,1mol/L HCl调节上清液pH 值至荞麦蛋白等电点4.5,沉淀水洗,1mol/L NaOH调pH 值至中性,冻干备用。1.2.1.2

蛋白水解物制备

调节2mg/100mL 荞麦分离蛋白溶液pH 值为8.0,37℃水浴中保温10min 后添加胰蛋白酶。制备水解度为0、4.5、8.3、12.8的蛋白质水解样品,进行灭酶处理(95℃水浴10min) ,冻干备用。1.2.2

功能特性指标测定方法

1.2.2.1水解度(DH)

水解度的测定用pH-stat 法[3]。

1.2.2.2溶解性(PS)[4]

将1mg/100mL的荞麦分离蛋白溶解于pH 值为7.0的10mmol/L磷酸缓冲液中,搅拌30min ,采用Lowry 法[5-6]测定上清液中蛋白质含量。蛋白质溶解性用100g 总蛋白质中能溶解的蛋白质的克数表示。1.2.2.3表面疏水度

表面疏水度测定用ANS 荧光探针法[7]。1.2.2.4

乳化特性[7]

把荞麦分离蛋白按0.2mg/100mL的质量浓度溶解于pH 值为7.0的10mmol/L磷酸缓冲液中,取9.0mL 0.2mg/100mL蛋白质溶液与3.0mL 玉米油在均质机上混合1min 以形成乳状液。立即在底部取50μL 的乳化液,用0.1% SDS稀释100倍至5mL ,在漩涡混合器上混合5s 左右后,用分光光度计测500nm 波长处的吸光度。10min 后在底部取50μL 的乳化液,重复操作。

2×2.303×A 0×n

2

乳化性/(m/g)=————————————

c×φ×(1-θ) ×10000

A 0

乳化稳定性/min=—————×10

A 0-A 10

式中:c 为蛋白质初始质量浓度/(g/mL);φ为光程,0. 01m ;n 为稀释倍数;θ为油的体积分数/%;A 0、A 10分别为稀释液在0、10m in 时的吸光度。1.2.2.5

起泡特性[7]

把荞麦分离蛋白按1mg/100mL的质量浓度溶解于pH

如图1所示,向反应体系中添加胰蛋白酶后,由于底物浓度相对较高,体系的瞬间反应速率很大,继续反应后,溶液中的底物数量持续减少,水解的速度逐渐减慢。当水解反应进行到240min 后,水解使蛋白质的絮凝物解体并形成可溶性蛋白质分子,使得溶液中的蛋白质浓度升高而更利于酶解反应的发生。400min 之后,水解速度又再次减缓。在本实验中,最长反应时间540min 时,水解度达到24.0%。2.2

水解物的体积排阻色谱分析

组分Ⅰ

0.4

1

0.3A U

0.20.100

3

6

23 9

12

15

组分Ⅱ

洗脱时间/min

凝胶柱:Sepharose CL-6B column (2.5μm ×90cm) ;洗脱条件:50mmol/L磷酸缓冲液(pH7.6),含0.2mmol/LNaCl 。峰1. 水解度0;峰2. 水解度4.5%;峰3. 水解度8.3%。

图2   荞麦分离蛋白及其水解物体积排阻色谱图

Fig.2 Size exclusion chromatographic profile of BPI and its

hydrolysates

由图2可见,荞麦分离蛋白的主要成分为组分Ⅰ(0~8min 出峰物质) ,其分子量最大,未被水解或水解

246 2010, Vol. 31, No. 05

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程度低。而组分Ⅱ(8min后出峰的物质) 为水解后产生的分子量较小的蛋白质以及肽链。随着水解进行,蛋白质样品中组分Ⅰ的比例逐渐减小,这是由于水解导致荞麦分离蛋白的分子变小,生成分子量较小的蛋白质甚至是更小的分子肽链,在洗脱曲线上则表现为组分Ⅱ的增多。2.3

表面疏水度

[***********]3002001000

未加热处理加热处理

次验证了溶解性的变化趋势。此外,如图4可见热处理对荞麦分离蛋白水解物的溶解性存在很小影响。2.5

乳化性

50乳化性/(m 2/g )

403020100

B PI-DH0

BPI-DH4.5

BPI-DH8.3

B PI-DH12.8

加热处理

未加热处理

表面疏水度

B PI-DH0BPI-DH4.5BPI-DH8.3BPI-DH12.8

BPI-DH0、BPI-DH4.5、BPI-DH8.3、BPI-DH12.8分别为水解度0、4.5%、8.3%、12.8%的荞麦分离蛋白。下同。

图3   荞麦分离蛋白及其水解物的表面疏水度

Fig.3 Effect of heating treatment on surface hydrophobicity of

BPI and its hydrolysates with different hydrolysis degrees

[**************]20

未加热处理加热处理

乳化稳定性/m i n

B PI-DH0BPI-DH4.5BPI-DH8.3 B PI-DH12.8

由图3可知,随着水解的进行,荞麦分离蛋白水解物表面疏水度显著下降。这是由于水解作用导致肽键断裂,增加溶液中氨基以及羧基等亲水性基团的数目,同时蛋白质分子中一些极性基团随着水解度的增大而逐步暴露,故导致蛋白表面疏水度的减小。同时,热处理能显著增加蛋白表面疏水度。这是由于加热作用使部分蛋白质发生热聚集,在聚集过程中,部分亲水基团相互作用而被包埋在新生成的致密结构内,使蛋白质表面疏水度升高。2.4

溶解性

5040P S /%

3020100

B PI-DH0

BPI-DH4.5

B PI-DH8.3 BPI-DH12.8

图4   pH值中性条件下荞麦分离蛋白及其水解物溶解性

Fig.4 Effect of heating treatment on protein solubility of BPI and

its hydrolysates with different hydrolysis degrees at pH 7

未加热处理

加热处理

图5   pH中性条件下荞麦分离蛋白及其水解物的乳化性及乳化稳定性Fig.5 Effect of heating treatment on emulsifying activity index(EAI) and emulsifying stability index (ESI) of BPI and its hydroly-sates with hydrolysis degrees at pH 7

如图5所示,随着水解度的增大,蛋白质水解物的乳化性显著增加,但水解度为12.8样品的乳化性低于水解度为8.3样品的乳化性。这与Kong 等[8]对胰蛋白酶对小麦谷蛋白改性研究的结果一致。在水解度较低的时候,胰蛋白酶对蛋质白分子的降解增加小分子蛋白质及多肽单元的数目,使多肽单元在油-水界面上的有效性增大,并具有更大的界面面积,因此使蛋白质溶液具有更好的乳化性。当荞麦蛋白质进一步水解时,蛋白质被降解为更小的分子,过度的水解反而不利于界面的形成,导致乳化性的降低。热处理能显著影响乳化性指标的大小。热处理后,荞麦蛋白质水解物的乳化性在数量上有明显的降幅。这是由于加热使蛋白质分子及多肽单元生成絮凝物,这部分物质由于溶解性不佳而对乳化液的形成的贡献较小,故乳化性降低。

乳化稳定性通常与时间和乳化液微粒直径有关,粒径越小稳定性越好[9]。随着水解的进行,蛋白质的二级结构遭到破坏而生成较小分子量的蛋白质分子以及多肽链,这使得分子的乳化液颗粒减小,从而导致蛋白质乳化稳定性增大。而热处理对乳化稳定性则产生负面影响,这是由于热处理使得水解产生的小分子肽链及蛋白水解物重新发生絮凝,生成较大颗粒,故导致乳化稳定性的降低。且在水解度为12.8%时,由于水解程度最大,故加热对其影响最显著。

如图4所示,随着水解进行,荞麦分离蛋白水解物溶解性得到显著改善。在DH12.8%时,荞麦分离蛋白水解物的溶解性比对照样增加34.6%。在水解的过程中,蛋白质部分肽键断裂,原先的紧密结构受到破坏,释放出一些易于水化的较小的多肽单位以及新暴露的氨基、羧基等亲水基团。这一结论与凝胶色谱洗脱曲线结论一致。表面疏水度结果显示水解物疏水度下降,再

※生物工程

2.6

起泡性

食品科学

2010, Vol. 31, No. 05247

解度的增大,蛋白质溶解性增大,表面疏水度降低,乳化性及乳化稳定性升高,起泡能力及泡沫稳定性下降。3.2

热处理对荞麦分离蛋白性质有较大影响。加热处理使荞麦分离蛋白溶解性上升,表面疏水度增大,乳

中性条件下荞麦分离蛋白及水解物的起泡能力、泡沫稳定性如表1所示。

表1   中性条件下荞麦分离蛋白及水解物的起泡特性Table 1 Foaming ability and foam stability of BPI and itshydrolysates with different hydrolysis degrees at pH 7样品

未经过加热处理 经过加热处理

起泡能力/%泡沫稳定性/%起泡能力/%泡沫稳定性/%77.5±0.4

86.9±2.276.2±4.656.3±3.360.7±3.4

117.7±2.089.1±2.255.1±3.235.8±1.5

46.0±0.058.3±0.666.9±2.885.4±1.2

化性及乳化稳定性下降,起泡能力提高,并且加热扭转了由于水解度下降导致的泡沫稳定性降低的趋势。3.3

本实验研究胰蛋白酶处理对荞麦分离蛋白功能特性的影响,并研究工业生产中常用的热处理灭酶方式对其影响,发现经由以上处理方式,荞麦分离蛋白的溶解性、乳化性、起泡性等功能特性均有一定程度的改善,这对食品工业中对荞麦资源的深加工利用有一定借鉴意义。

参考文献:

BPI-DH0

BPI-DH4.553.9±1.6BPI-DH8.349.4±1.7BPI-DH12.833.5±2.3

一般认为较大的蛋白质分子拥有较高的起泡性。

[7]

泡沫产生之后,为了稳定泡沫,必须在每一个起泡周围形成厚的、黏着的、弹性的、连续的和空气不能渗透的蛋白质膜。本实验中,经胰蛋白酶水解后,荞麦蛋白分子的肽链长度变短,起泡能力降低,稳定性

[9]

[1]LI S Q, ZHANG Q H. Advances in the development of functional foodsfrom buckwheat[J]. Critical Reviews in Food Science and Nutrition,2001, 41(6): 451-464.

[2][3][4]

杜双奎, 李志西, 于修烛. 荞麦蛋白研究进展[J]. 食品科学, 2004, 25(10): 409-414.

NISSEN A. Enzymatic hydrolysis of food proteins[M]. London: ElsevierApplied Science Publishers, 1986: 12-14.

TANG C H. Functional properties and in vitro digestibility of buck-wheat protein products: influence of processing[J]. Journal of FoodEngineering, 2007, 82(4): 568-576.

也呈下降的趋势。这是由于随着水解度的增大,蛋白质分子结构变得松散不连续,所形成的泡沫蛋白质膜稳定性随之变差。

对荞麦蛋白水解物进行热处理后,蛋白质的起泡能力显著增强,且低水解度时增幅较大。但热处理后其稳定性的变化较为复杂。水解度为0、4.5%样品经加热过程后稳定性下降,而水解度为8.3%、12.8%样品经过加热过程后稳定性上升。这是由于,一方面加热产生的絮凝物体积过大而在稳定泡沫中起着不利的作用,另一方面蛋白质分子变松散后受热生成小絮凝物利于形成厚的蛋白质膜而能稳定泡沫。33.1

结  论

[5][6][7]

高茜娣. Lowry法测定蛋白质含量的统计分析[J]. 应用数学, 2001,14(4): 121-123.

李红兵, 李宗让, 王志玲, 等. 微量法测定蛋白质含量[J]. 生物化学与生物物理进展, 1993, 20(5): 402-403.

YIN S W, TANG C H, CAO J S, et al. Effects of limited enzymatichydrolysis with trypsin on the functional properties of hemp (Cannabis sativa L.) protein isolate[J]. Food Chemistry, 2008, 106(3): 1004-1013.

[8]KONG X Z, ZHOU H M, QIAN H F. Enzymatic preparation andfunctional properties of wheat gluten hydrolysates[J]. Food Chemistry,2006, 101(2): 615-620.

[9]莫重文, 马宇翔, 杨国龙. 蛋白质化学与工艺学[M]. 北京: 化学工业出版社, 2007: 90-91.

水解过程对荞麦分离蛋白的性质影响较大。随水

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食品科学※生物工程

胰蛋白酶水解对荞麦蛋白功能特性的影响

龚 倩,唐传核,杨晓泉*

(华南理工大学轻工与食品学院,广东 广州 510640)

摘 要:研究胰蛋白酶水解及热处理对荞麦蛋白功能特性的影响。结果表明:随水解度的增大,蛋白质溶解性增大,表面疏水度降低,乳化性及乳化稳定性升高,起泡能力及泡沫稳定性下降。热处理使荞麦蛋白溶解性上升,表面疏水度增大,乳化性及乳化稳定性下降,起泡能力上升,并且加热处理可抑制由于水解度下降导致的泡沫稳定性降低的趋势。

关键词:荞麦蛋白;胰蛋白酶;热处理;功能特性

Effect of Trypsin Hydrolysis on Functional Properties of Buckwheat Protein Isolate

GONG Qian,TANG Chuan-he,YANG Xiao-quan*

(College of Light Industry and Food Sciences, South China University of Technology, Guangzhou 510640, China)Abstract :In this study, the effects of limited trypsin hydrolysis and heating treatment on physicochemical and functionalproperties of buchwheat protein isolate (BPI) were investigated. Results indicated that higher hydrolysis degree could result inthe improvement of protein solubility and emulsification stability, and the reduction of surface hydrophobicity, emulsifyingability and stability, and foaming ability and foam stability. However, heating treatment could lead to the increase of proteinsolubility, surface hydrophobicity and foaming ability, and the decrease of emulsifying activity and emulsifying stability.Moreover, heating treatment could inhibit the reduction trend of foam stability due to decreasing hydrolysis degree.Key words:buckwheat protein ;trypsin ;heating treatment;functional property

中图分类号:TQ936.1 文献标识码:A 文章编号:1002-6630(2010)05-0244-04

荞麦是具有较高营养价值和药用价值的作物,在每克荞麦种子中含有100~125mg 蛋白质,650~750mg 碳水化合物,20~25mg 脂肪以及20~25mg 无机盐[1]。此外荞麦中还含有铁、钙、磷、铜、锌、硼、碘、铂、钴等多种微量元素以及许多对某些慢性病具有医治作用的稀有成分如黄酮、类黄酮、植物甾醇、荞麦碱及硫氨素结合蛋白等。荞麦蛋白的组分同小麦粉差异较大,水溶性清蛋白的含量较高(31.8%~42.3%),谷蛋白含量次之(25.4%~26.1%),醇溶蛋白含量最低(1.7%~2.3%)。荞麦虽然被认为是假禾谷类作物,但高含量的清蛋白、球蛋白,低含量的醇溶蛋白、谷蛋白表明荞麦蛋白质与其他豆类植物蛋白更相似[2]。

目前国内对荞麦资源的利用仍处于起步阶段,市场上常见的荞麦制品为荞麦面、荞麦粥等粗加工而成的传统荞麦食品。这种传统的粗放型的加工方式不利于充分利用荞麦中的营养成分。为此,在传统加工技术的基础上,利用新的技术来改善传统荞麦食品品质是未来荞

收稿日期:2009-06-14

麦制品发展的趋势。本实验考察胰蛋白酶水解及热处理对荞麦蛋白功能特性的影响,以期为荞麦深加工提供指导。11.1

材料与方法

材料与设备

荞麦种子(甜荞麦) 市购;胰蛋白酶粉末(从猪胰脏中提取,酶比活力2×10-7~1×10-6U/mg) 诺维信公司。

高效液相色谱仪 美国Waters 公司;凯氏定氮仪上海洪纪仪器设备有限公司;冷冻干燥机 德国Christ 公司;冷冻离心机 日本Hitachi 公司;F93A 荧光分光光度计 上海思龙科学仪器有限公司;SP-721可见分光光度计 上海安锐自动化仪表有限公司;RW20 digital均质机 德国IKA 公司;数显pH 计、分析天平 德国Mettler Toledo公司;电动强力搅拌机 上海标本模型厂;电热恒温水浴锅 江苏金坛市宏华仪器有限公司;JB-1电磁搅拌机 上海雷磁新泾仪器有限公司;WH-1微型旋涡混合仪 上海沪西分析仪器有限公司。

作者简介:龚倩(1988—) ,女,硕士研究生,研究方向为植物蛋白工程。E-mail :[email protected]*—) E-mail :

※生物工程

1.21.2.1

方法

食品科学

2010, Vol. 31, No. 05245

值为7.0的10mmol/L磷酸缓冲液中,取10.0mL 置于25mL 量筒中,以10000r/min的速度均质2min 。起泡能力指混合后蛋白质溶液总体积的增加,起泡稳定性是指30min 后留存的泡沫的体积百分比。22.1

结果与分析

胰蛋白酶对荞麦蛋白的水解作用

2520D H /%

1510500

100

200

300时间/min

荞麦分离蛋白质量浓度2mg/100mL,pH8.0,酶与蛋白底物的比为1:200(m /m ) 。图1   胰蛋白酶酶解荞麦蛋白水解度-时间关系曲线

Fig.1 Time course of hydrolysis degree of BPI hydrolyzed with

trypsin

400

500

600

实验流程

荞麦种子 →粉碎→碱法提取蛋白质→荞麦分离蛋白    添加胰蛋白酶→↓

蛋白质水解产物←冻干←蛋白质水解液

1.2.1.1荞麦分离蛋白的提取

料液质量比1:10,pH8.0,恒温40℃搅拌提取1h ,6000r/min离心分离20min ,1mol/L HCl调节上清液pH 值至荞麦蛋白等电点4.5,沉淀水洗,1mol/L NaOH调pH 值至中性,冻干备用。1.2.1.2

蛋白水解物制备

调节2mg/100mL 荞麦分离蛋白溶液pH 值为8.0,37℃水浴中保温10min 后添加胰蛋白酶。制备水解度为0、4.5、8.3、12.8的蛋白质水解样品,进行灭酶处理(95℃水浴10min) ,冻干备用。1.2.2

功能特性指标测定方法

1.2.2.1水解度(DH)

水解度的测定用pH-stat 法[3]。

1.2.2.2溶解性(PS)[4]

将1mg/100mL的荞麦分离蛋白溶解于pH 值为7.0的10mmol/L磷酸缓冲液中,搅拌30min ,采用Lowry 法[5-6]测定上清液中蛋白质含量。蛋白质溶解性用100g 总蛋白质中能溶解的蛋白质的克数表示。1.2.2.3表面疏水度

表面疏水度测定用ANS 荧光探针法[7]。1.2.2.4

乳化特性[7]

把荞麦分离蛋白按0.2mg/100mL的质量浓度溶解于pH 值为7.0的10mmol/L磷酸缓冲液中,取9.0mL 0.2mg/100mL蛋白质溶液与3.0mL 玉米油在均质机上混合1min 以形成乳状液。立即在底部取50μL 的乳化液,用0.1% SDS稀释100倍至5mL ,在漩涡混合器上混合5s 左右后,用分光光度计测500nm 波长处的吸光度。10min 后在底部取50μL 的乳化液,重复操作。

2×2.303×A 0×n

2

乳化性/(m/g)=————————————

c×φ×(1-θ) ×10000

A 0

乳化稳定性/min=—————×10

A 0-A 10

式中:c 为蛋白质初始质量浓度/(g/mL);φ为光程,0. 01m ;n 为稀释倍数;θ为油的体积分数/%;A 0、A 10分别为稀释液在0、10m in 时的吸光度。1.2.2.5

起泡特性[7]

把荞麦分离蛋白按1mg/100mL的质量浓度溶解于pH

如图1所示,向反应体系中添加胰蛋白酶后,由于底物浓度相对较高,体系的瞬间反应速率很大,继续反应后,溶液中的底物数量持续减少,水解的速度逐渐减慢。当水解反应进行到240min 后,水解使蛋白质的絮凝物解体并形成可溶性蛋白质分子,使得溶液中的蛋白质浓度升高而更利于酶解反应的发生。400min 之后,水解速度又再次减缓。在本实验中,最长反应时间540min 时,水解度达到24.0%。2.2

水解物的体积排阻色谱分析

组分Ⅰ

0.4

1

0.3A U

0.20.100

3

6

23 9

12

15

组分Ⅱ

洗脱时间/min

凝胶柱:Sepharose CL-6B column (2.5μm ×90cm) ;洗脱条件:50mmol/L磷酸缓冲液(pH7.6),含0.2mmol/LNaCl 。峰1. 水解度0;峰2. 水解度4.5%;峰3. 水解度8.3%。

图2   荞麦分离蛋白及其水解物体积排阻色谱图

Fig.2 Size exclusion chromatographic profile of BPI and its

hydrolysates

由图2可见,荞麦分离蛋白的主要成分为组分Ⅰ(0~8min 出峰物质) ,其分子量最大,未被水解或水解

246 2010, Vol. 31, No. 05

食品科学※生物工程

程度低。而组分Ⅱ(8min后出峰的物质) 为水解后产生的分子量较小的蛋白质以及肽链。随着水解进行,蛋白质样品中组分Ⅰ的比例逐渐减小,这是由于水解导致荞麦分离蛋白的分子变小,生成分子量较小的蛋白质甚至是更小的分子肽链,在洗脱曲线上则表现为组分Ⅱ的增多。2.3

表面疏水度

[***********]3002001000

未加热处理加热处理

次验证了溶解性的变化趋势。此外,如图4可见热处理对荞麦分离蛋白水解物的溶解性存在很小影响。2.5

乳化性

50乳化性/(m 2/g )

403020100

B PI-DH0

BPI-DH4.5

BPI-DH8.3

B PI-DH12.8

加热处理

未加热处理

表面疏水度

B PI-DH0BPI-DH4.5BPI-DH8.3BPI-DH12.8

BPI-DH0、BPI-DH4.5、BPI-DH8.3、BPI-DH12.8分别为水解度0、4.5%、8.3%、12.8%的荞麦分离蛋白。下同。

图3   荞麦分离蛋白及其水解物的表面疏水度

Fig.3 Effect of heating treatment on surface hydrophobicity of

BPI and its hydrolysates with different hydrolysis degrees

[**************]20

未加热处理加热处理

乳化稳定性/m i n

B PI-DH0BPI-DH4.5BPI-DH8.3 B PI-DH12.8

由图3可知,随着水解的进行,荞麦分离蛋白水解物表面疏水度显著下降。这是由于水解作用导致肽键断裂,增加溶液中氨基以及羧基等亲水性基团的数目,同时蛋白质分子中一些极性基团随着水解度的增大而逐步暴露,故导致蛋白表面疏水度的减小。同时,热处理能显著增加蛋白表面疏水度。这是由于加热作用使部分蛋白质发生热聚集,在聚集过程中,部分亲水基团相互作用而被包埋在新生成的致密结构内,使蛋白质表面疏水度升高。2.4

溶解性

5040P S /%

3020100

B PI-DH0

BPI-DH4.5

B PI-DH8.3 BPI-DH12.8

图4   pH值中性条件下荞麦分离蛋白及其水解物溶解性

Fig.4 Effect of heating treatment on protein solubility of BPI and

its hydrolysates with different hydrolysis degrees at pH 7

未加热处理

加热处理

图5   pH中性条件下荞麦分离蛋白及其水解物的乳化性及乳化稳定性Fig.5 Effect of heating treatment on emulsifying activity index(EAI) and emulsifying stability index (ESI) of BPI and its hydroly-sates with hydrolysis degrees at pH 7

如图5所示,随着水解度的增大,蛋白质水解物的乳化性显著增加,但水解度为12.8样品的乳化性低于水解度为8.3样品的乳化性。这与Kong 等[8]对胰蛋白酶对小麦谷蛋白改性研究的结果一致。在水解度较低的时候,胰蛋白酶对蛋质白分子的降解增加小分子蛋白质及多肽单元的数目,使多肽单元在油-水界面上的有效性增大,并具有更大的界面面积,因此使蛋白质溶液具有更好的乳化性。当荞麦蛋白质进一步水解时,蛋白质被降解为更小的分子,过度的水解反而不利于界面的形成,导致乳化性的降低。热处理能显著影响乳化性指标的大小。热处理后,荞麦蛋白质水解物的乳化性在数量上有明显的降幅。这是由于加热使蛋白质分子及多肽单元生成絮凝物,这部分物质由于溶解性不佳而对乳化液的形成的贡献较小,故乳化性降低。

乳化稳定性通常与时间和乳化液微粒直径有关,粒径越小稳定性越好[9]。随着水解的进行,蛋白质的二级结构遭到破坏而生成较小分子量的蛋白质分子以及多肽链,这使得分子的乳化液颗粒减小,从而导致蛋白质乳化稳定性增大。而热处理对乳化稳定性则产生负面影响,这是由于热处理使得水解产生的小分子肽链及蛋白水解物重新发生絮凝,生成较大颗粒,故导致乳化稳定性的降低。且在水解度为12.8%时,由于水解程度最大,故加热对其影响最显著。

如图4所示,随着水解进行,荞麦分离蛋白水解物溶解性得到显著改善。在DH12.8%时,荞麦分离蛋白水解物的溶解性比对照样增加34.6%。在水解的过程中,蛋白质部分肽键断裂,原先的紧密结构受到破坏,释放出一些易于水化的较小的多肽单位以及新暴露的氨基、羧基等亲水基团。这一结论与凝胶色谱洗脱曲线结论一致。表面疏水度结果显示水解物疏水度下降,再

※生物工程

2.6

起泡性

食品科学

2010, Vol. 31, No. 05247

解度的增大,蛋白质溶解性增大,表面疏水度降低,乳化性及乳化稳定性升高,起泡能力及泡沫稳定性下降。3.2

热处理对荞麦分离蛋白性质有较大影响。加热处理使荞麦分离蛋白溶解性上升,表面疏水度增大,乳

中性条件下荞麦分离蛋白及水解物的起泡能力、泡沫稳定性如表1所示。

表1   中性条件下荞麦分离蛋白及水解物的起泡特性Table 1 Foaming ability and foam stability of BPI and itshydrolysates with different hydrolysis degrees at pH 7样品

未经过加热处理 经过加热处理

起泡能力/%泡沫稳定性/%起泡能力/%泡沫稳定性/%77.5±0.4

86.9±2.276.2±4.656.3±3.360.7±3.4

117.7±2.089.1±2.255.1±3.235.8±1.5

46.0±0.058.3±0.666.9±2.885.4±1.2

化性及乳化稳定性下降,起泡能力提高,并且加热扭转了由于水解度下降导致的泡沫稳定性降低的趋势。3.3

本实验研究胰蛋白酶处理对荞麦分离蛋白功能特性的影响,并研究工业生产中常用的热处理灭酶方式对其影响,发现经由以上处理方式,荞麦分离蛋白的溶解性、乳化性、起泡性等功能特性均有一定程度的改善,这对食品工业中对荞麦资源的深加工利用有一定借鉴意义。

参考文献:

BPI-DH0

BPI-DH4.553.9±1.6BPI-DH8.349.4±1.7BPI-DH12.833.5±2.3

一般认为较大的蛋白质分子拥有较高的起泡性。

[7]

泡沫产生之后,为了稳定泡沫,必须在每一个起泡周围形成厚的、黏着的、弹性的、连续的和空气不能渗透的蛋白质膜。本实验中,经胰蛋白酶水解后,荞麦蛋白分子的肽链长度变短,起泡能力降低,稳定性

[9]

[1]LI S Q, ZHANG Q H. Advances in the development of functional foodsfrom buckwheat[J]. Critical Reviews in Food Science and Nutrition,2001, 41(6): 451-464.

[2][3][4]

杜双奎, 李志西, 于修烛. 荞麦蛋白研究进展[J]. 食品科学, 2004, 25(10): 409-414.

NISSEN A. Enzymatic hydrolysis of food proteins[M]. London: ElsevierApplied Science Publishers, 1986: 12-14.

TANG C H. Functional properties and in vitro digestibility of buck-wheat protein products: influence of processing[J]. Journal of FoodEngineering, 2007, 82(4): 568-576.

也呈下降的趋势。这是由于随着水解度的增大,蛋白质分子结构变得松散不连续,所形成的泡沫蛋白质膜稳定性随之变差。

对荞麦蛋白水解物进行热处理后,蛋白质的起泡能力显著增强,且低水解度时增幅较大。但热处理后其稳定性的变化较为复杂。水解度为0、4.5%样品经加热过程后稳定性下降,而水解度为8.3%、12.8%样品经过加热过程后稳定性上升。这是由于,一方面加热产生的絮凝物体积过大而在稳定泡沫中起着不利的作用,另一方面蛋白质分子变松散后受热生成小絮凝物利于形成厚的蛋白质膜而能稳定泡沫。33.1

结  论

[5][6][7]

高茜娣. Lowry法测定蛋白质含量的统计分析[J]. 应用数学, 2001,14(4): 121-123.

李红兵, 李宗让, 王志玲, 等. 微量法测定蛋白质含量[J]. 生物化学与生物物理进展, 1993, 20(5): 402-403.

YIN S W, TANG C H, CAO J S, et al. Effects of limited enzymatichydrolysis with trypsin on the functional properties of hemp (Cannabis sativa L.) protein isolate[J]. Food Chemistry, 2008, 106(3): 1004-1013.

[8]KONG X Z, ZHOU H M, QIAN H F. Enzymatic preparation andfunctional properties of wheat gluten hydrolysates[J]. Food Chemistry,2006, 101(2): 615-620.

[9]莫重文, 马宇翔, 杨国龙. 蛋白质化学与工艺学[M]. 北京: 化学工业出版社, 2007: 90-91.

水解过程对荞麦分离蛋白的性质影响较大。随水


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