失血性休克实验
实验性失血性休克
【目的】了解失血性休克动物模型的复制方法；观察失血性休克时的主要体征及血流动力学变化特点；探讨失血性休克的发病机理及救治措施。
【原理】根据微循环学说，休克定义为各种原因引起有效循环血量减少，微循环灌流障碍，引起重要生命器官血液灌注不足，从而导致细胞功能紊乱的全身性病理过程。休克的病因有多种，本实验采用颈动脉放血的方法，直接减少有效循环血量，复制低血容量性休克模型。由于放血一定程度后可使循环血量不足，静脉回心血量减少，血压下降，通过压力感受器反射，引起交感神经兴奋，外周血管收缩，组织灌流量急剧减少，导致失血性休克。通过输液，补充血容量，抢救休克，同时使用不同血管活性药物，比较其疗效，分析它们在失血性休克治疗中的作用。
【器材】 BL-420生物机能实验系统，压力换能器两套，张力换能器一套，动物实验手术器械一套，静脉输液装置一套，尿量测定装置一套，10ml量筒一个，注射器（2ml、5ml、10ml、30ml），兔台，婴儿秤。
【药品】 20%乌拉坦溶液，0.9%生理盐水， 1%肝素生理盐水，1%去甲基肾上腺素， 10%葡萄糖水注射液。
【动物】家兔。
【观察指标】动脉血压（Bp，mmHg）、中心静脉压（CVP ，mmHg）、呼吸（频率、深度）、尿量。
【方法】
1.手术操作
(1)家兔称重后，腹腔注射20%乌拉坦(5ml/kg)进行麻醉，将动物仰卧固定在实验台上，颈部和腹部剪毛备皮；
(2)从甲状软骨至胸骨切迹之间切开颈部正中皮肤，切口长度约5cm；
(3)翻开右侧皮肤，见颜色暗红且较粗大的颈外静脉。由于静脉血管壁很薄且不易与筋膜区分，应使用血管钳沿血管走行方向小心钝性分离，将血管外层筋膜分离干净。分离出约2～3cm左右的右侧颈外静脉后，穿双线备用。
(4)在气管左侧胸骨舌骨肌和胸锁乳突肌之间钝性分离，其深层即可见颈动脉
鞘，触之有明显搏动感。以血管钳仔细分离出左侧颈总动脉(注意：勿损伤迷走神经)，穿双线备用(图 1 )。
图 1 家兔颈外静脉和颈总动脉示意图
(5)下腹部耻骨联合上作下腹正中切口，长3～5cm，找出膀胱后，用小圆针细线在少血管区域进行断续荷包缝合。在荷包内作一直切口，插管后拉紧缝线固定之。收集尿液于10ml量筒内(图2 )。
(6)由耳缘静脉注入l%肝素(1：ml/kg)抗凝。
图2 膀胱插管示意图
(7)先用血管夹夹闭右侧颈外静脉的近心端，再用缝线结扎远心端，用眼科剪在靠近结扎处管壁上剪一小口(约为血管直径的1/4～l/3)，仔细插入事先已注满生理盐水并排除气泡的静脉插管。小心调整角度，轻轻将插管插入静脉约5cm，结扎固定。通过三通开关连接中心静脉压压力换能器和静脉输液装置，以测定中心静脉压(以mmHg表示)。
(8)结扎左侧颈总动脉的远心端，再用血管夹夹闭其近心端，按如上方法插入颈总动脉插管，结扎固定，通过三通开关连接动脉血压压力传感器，以测定动脉血压(以mmHg表示)。
(9)在动物胸腹部呼吸最明显处，以弯针穿线固定于张力传感器，调整传感器的方向及缝线的松紧程度，以描记出呼吸曲线。
2.实验步骤
(1)动物稳定10min后，记录正常状态下的血压(mmHg)、中心静脉压(mmHg)、呼吸曲线及尿量(ml/10min)。
1.取显微镜一台，卸下载物台，将镜身由纵轴位拉至水平位，将一块带孔的泡沫塑料固定于载物台上，然后，将镜身侧位安置在接近家兔上腹部切口处，用无齿卵圆镊自腹腔轻轻提出大网膜，将其游离末端平铺于预先浸满生理盐水的海绵垫上，并用大头针固定于镜台泡沫上方，调整恒温恒流滴数(30滴/分)。
2.在低倍镜下找一个较为标准的微循环单位，认准小动脉，小静脉，直捷通路，动-静脉短路及真毛细血管网，仔细观察血管形态、管径大小以及微血流的流速、流态。
3.从股动脉放血，至血压维持于5.3kPa(40mmHg)，若血压回升，可再放少量血，使血压维持在5.3kPa半小时，观察微循环改变。
4.再次放血，使血压维持于3.3kPa(25mmHg)3min，观察微循环改变。
5.快速补液(40滴/分左右)后观察上述指标变化。
失血性休克实验
实验性失血性休克
【目的】了解失血性休克动物模型的复制方法；观察失血性休克时的主要体征及血流动力学变化特点；探讨失血性休克的发病机理及救治措施。
【原理】根据微循环学说，休克定义为各种原因引起有效循环血量减少，微循环灌流障碍，引起重要生命器官血液灌注不足，从而导致细胞功能紊乱的全身性病理过程。休克的病因有多种，本实验采用颈动脉放血的方法，直接减少有效循环血量，复制低血容量性休克模型。由于放血一定程度后可使循环血量不足，静脉回心血量减少，血压下降，通过压力感受器反射，引起交感神经兴奋，外周血管收缩，组织灌流量急剧减少，导致失血性休克。通过输液，补充血容量，抢救休克，同时使用不同血管活性药物，比较其疗效，分析它们在失血性休克治疗中的作用。
【器材】 BL-420生物机能实验系统，压力换能器两套，张力换能器一套，动物实验手术器械一套，静脉输液装置一套，尿量测定装置一套，10ml量筒一个，注射器（2ml、5ml、10ml、30ml），兔台，婴儿秤。
【药品】 20%乌拉坦溶液，0.9%生理盐水， 1%肝素生理盐水，1%去甲基肾上腺素， 10%葡萄糖水注射液。
【动物】家兔。
【观察指标】动脉血压（Bp，mmHg）、中心静脉压（CVP ，mmHg）、呼吸（频率、深度）、尿量。
【方法】
1.手术操作
(1)家兔称重后，腹腔注射20%乌拉坦(5ml/kg)进行麻醉，将动物仰卧固定在实验台上，颈部和腹部剪毛备皮；
(2)从甲状软骨至胸骨切迹之间切开颈部正中皮肤，切口长度约5cm；
(3)翻开右侧皮肤，见颜色暗红且较粗大的颈外静脉。由于静脉血管壁很薄且不易与筋膜区分，应使用血管钳沿血管走行方向小心钝性分离，将血管外层筋膜分离干净。分离出约2～3cm左右的右侧颈外静脉后，穿双线备用。
(4)在气管左侧胸骨舌骨肌和胸锁乳突肌之间钝性分离，其深层即可见颈动脉
鞘，触之有明显搏动感。以血管钳仔细分离出左侧颈总动脉(注意：勿损伤迷走神经)，穿双线备用(图 1 )。
图 1 家兔颈外静脉和颈总动脉示意图
(5)下腹部耻骨联合上作下腹正中切口，长3～5cm，找出膀胱后，用小圆针细线在少血管区域进行断续荷包缝合。在荷包内作一直切口，插管后拉紧缝线固定之。收集尿液于10ml量筒内(图2 )。
(6)由耳缘静脉注入l%肝素(1：ml/kg)抗凝。
图2 膀胱插管示意图
(7)先用血管夹夹闭右侧颈外静脉的近心端，再用缝线结扎远心端，用眼科剪在靠近结扎处管壁上剪一小口(约为血管直径的1/4～l/3)，仔细插入事先已注满生理盐水并排除气泡的静脉插管。小心调整角度，轻轻将插管插入静脉约5cm，结扎固定。通过三通开关连接中心静脉压压力换能器和静脉输液装置，以测定中心静脉压(以mmHg表示)。
(8)结扎左侧颈总动脉的远心端，再用血管夹夹闭其近心端，按如上方法插入颈总动脉插管，结扎固定，通过三通开关连接动脉血压压力传感器，以测定动脉血压(以mmHg表示)。
(9)在动物胸腹部呼吸最明显处，以弯针穿线固定于张力传感器，调整传感器的方向及缝线的松紧程度，以描记出呼吸曲线。
2.实验步骤
(1)动物稳定10min后，记录正常状态下的血压(mmHg)、中心静脉压(mmHg)、呼吸曲线及尿量(ml/10min)。
1.取显微镜一台，卸下载物台，将镜身由纵轴位拉至水平位，将一块带孔的泡沫塑料固定于载物台上，然后，将镜身侧位安置在接近家兔上腹部切口处，用无齿卵圆镊自腹腔轻轻提出大网膜，将其游离末端平铺于预先浸满生理盐水的海绵垫上，并用大头针固定于镜台泡沫上方，调整恒温恒流滴数(30滴/分)。
2.在低倍镜下找一个较为标准的微循环单位，认准小动脉，小静脉，直捷通路，动-静脉短路及真毛细血管网，仔细观察血管形态、管径大小以及微血流的流速、流态。
3.从股动脉放血，至血压维持于5.3kPa(40mmHg)，若血压回升，可再放少量血，使血压维持在5.3kPa半小时，观察微循环改变。
4.再次放血，使血压维持于3.3kPa(25mmHg)3min，观察微循环改变。
5.快速补液(40滴/分左右)后观察上述指标变化。