高致病性猪蓝耳病的病因及防制方法
[一]、文献综述
猪蓝耳病又称猪繁殖与呼吸综合征（PRRS），是由猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）引起的一种免疫抑制性病，以成年猪生殖障碍、早产、流产和死胎，以及仔猪呼吸异常为特征的传染病[1]。高致病性蓝耳病是由猪繁殖与呼吸综合征病毒变异株引起的一种急性高致病性传染病。仔猪发病率可达100%，死亡率可达50%，母猪流产率可达30%，育肥猪也可发病死亡。
一、病因分析及发病特点
（一）病毒感染的引起疫病的发生及特点
1、病原
属于尼多病毒目动脉炎病毒科。由于以lelystate株为代表的欧洲型毒株和以ATTC-VR-2332株为代表的美洲型毒株在基因组成上和结构蛋白抗原特性上存在明显差异。因此又将PRRSV分为A亚群(欧洲型)和B亚群(美洲型)。
2、流行特点
1.猪和野猪是PRRS唯一的自然感染宿主。 2.本病的发生与气候有关，特别是春秋多风季节。3. PRRSV（蓝耳病病毒）可在猪体内持续潜伏感染，本病一旦发生很难根除。4.PRRSV本身有高度的感染性，可经水平传播与垂直传染多种途径感染猪群。 5.PRRSV不同毒株之间的抗原性不同。尤其在美洲株和欧洲株之间差异更是明显，这对于建立精确的诊断方法和研制有效疫苗已构成很大障碍。
3、临床表现
本病的潜伏期差异较大，最短为3d，最长为37d,自然感染一般为4天。本病临床上可分为急性型、慢性型、亚临诊型等。
急性型
发病母猪主要表现为精神倦怠、食欲减少或废绝、发热，出现不同程度的呼吸困难。妊娠后期(105～107d)，母猪发生流产、早产、死胎、木乃伊胎、弱仔。母猪流产率可达50%～70%，死产率可达35%以上。部分新生仔猪表现为呼吸困难，运动失调及轻瘫等症状，产后1周内死亡率明显增高(40%～80%)。少数母猪表现为产后无乳、胎衣停滞及分泌物增多。1月龄仔猪表现出典型的呼吸道症状，呼吸困难，有时呈腹式呼吸；食欲减退或废绝；体温升高到40℃以上；腹泻；被毛粗乱；共济失调；渐进性消瘦；眼睑水肿；少部分仔猪可见耳部、体表皮肤发紫，躯体末端皮肤发绀。断奶前仔猪死亡率可达80%～100%，断奶后仔猪的增重降低，日增重可下降50%～75%，死亡率升高(10%～25%)。耐过猪生长缓慢，易继发其他疾病。
慢性型
这是目前在规模化猪场PRRS表现的主要形式。主要表现为猪群的生产性能下降，生长缓慢，母猪群繁殖性能下降，猪群免疫功能下降，易继发感染其他细菌性和病毒性疾病。
亚临诊型
感染猪不发病，表现为PRRSV的持续性感染，猪群的血清学抗体阳性，阳性率一般在10%～88%。
剖检变化
病畜剖检时可见心脏、心冠脂肪、心内膜均有出血点，肝脏肿胀，有坏死灶。出血性肺炎和弥漫性间质性肺炎，个别右肺有瘀血。脾脏肿大，有出血点。肾脏肿大出血，肠系膜淋巴结肿。喉头充血，充满填充物，颌下淋巴结肿大出血，切面肿大，胃出血溃疡，回盲口、膀胱出血溃疡。气管黏膜炎症，充满填充物。 诊断
根据临床资料进行诊断比较困难，因为本病易继发其他疾病，给诊断带来很大的困难。在生产的任何阶段，猪群中出现呼吸道症状，发现有繁殖障碍，猪群整体情况不理想，就要考虑PRRS。即使临床症状不明显，或缺少临床症状也不表明猪群中无PRRS病毒，因此还应结合实验室的检查。
4. 猪蓝耳病病毒的病毒特点，缘何容易发生变异
猪蓝耳病病毒为单股正链RNA病毒，在第10次国际病毒大会上将该病毒归属于新设立的动脉炎病毒科、动脉炎病毒属。PRRSV为一种有囊膜的病毒，呈球
形或卵圆形，直径约为45～65nm，呈20面体对称，囊膜表面有较小的纤突，表面相对平滑，核衣壳为立方形，核心直径25～35nm。
作为RNA病毒，PRRSV的基因在合成时容易出现内在性错误，可出现点突变、删除、添加和毒株间基因重组，因此PRRSV的基因容易发生变异，不同分离株之间基因组存在广泛变异。依据血清学及基因序列分析将PRRSV分为两种基本基因型，以LV型为代表的欧洲型和以VR2332为代表的北美洲型，两种的核苷酸序列同源性约为60％。通过序列分析显示，美洲型毒株间的变异明显大于欧洲型毒株间的变异。PRRSV在猪体内持续感染过程中，会出现病毒亚种或亚群。
国外的研究表明，同一基因型的PRRSV分离毒株之间存在明显的序列差异，特别是在基因组ORF1a的nsp1b和nsp2，ORF3和ORF5的变异性很大。我国已发现nsp2的变异主要表现在氨基酸的缺失，此次发现的高致病性猪蓝耳病就是由nsp2缺失30个氨基酸的变异株引起的
5．猪蓝耳病的历史及危害
猪蓝耳病已发现30余年了，最早于1987年在美国的北卡罗来纳州首次爆发。最初人们不能确定其病因，故此一度被称为“神秘病”。1991年荷兰分离到该病的病原“LV”病毒株，欧盟提议将此病命名为“猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）”，1992年国际兽医组织将其定为B类传染病。PRRS病毒分为欧洲型和美洲型两种，分别以1991荷兰分离的LV和1992年美国分离的VR-2332为代表毒株。
1996年郭宝清等专家首次从国内发病猪群中分离出PRRSV，从而证实我国存在本病。此后，该病蔓延至全国各省市，先后有十余省市报道过本病的发生和流行，并且分离和鉴定了猪繁殖与呼吸综合征病毒。目前该病在我国广泛存在，是我国流行的主要猪病之一，主要造成母猪繁殖障碍和大量仔猪死亡，给养猪业造成严重经济损失。
（二）继发感染或混合感染等综合因素的发病及其致病机理
一般猪场发病主要是由蓝耳病病毒感染发病，从而引起动物机体免疫缺失。环境卫生及饲养管理上没能及时跟上，或疫苗使用不当，疫苗的质量不达标等因素造成免疫失败，也可降低机体的抗病力，同已存在饲养环境中的猪瘟病毒、伪狂犬、圆环病毒Ⅱ型、传染性胸膜肺炎及气喘病等以呼吸症状为主传染疫病源的感染而发病。病猪疫病死亡后，从病死猪的实验室诊断和病原微生物的培养、分离均可检出PRRS、伪狂犬、猪瘟、细小病毒、圆环病毒的也存在，同时链球菌、弓形体、附红体、伤寒等细菌和寄生虫的混合感染。而人们易忽略沙门氏菌，往往这种病菌在猪场发生PRRS感染时更容易引起败血症的加重，治疗难度进一步加大。
非典型猪瘟、伪狂犬、链球菌和弓形虫等病原微生物的感染是否启动PRRS而产生协同作用，造成更加严重的疾病流行问题。
PRRSV感染后，首先在局部的易感巨噬细胞中复制，然后迅速向全身淋巴组织和肺扩散，有时也向其他组织扩散。一般说来，临床疾病的发生以及病损程度与病毒最高滴度出现的时间和出现的组织有关，如在染毒后的7-14天，肺脏和淋巴结中的病毒滴度最高。这是因为PRRSV主要在单核细胞分化较好的子细胞中复制，这些分化较好的子细胞具有220kDa的糖蛋白受体，PRRSV与该受体结合然后经过受体介导的内吞作用进入细胞内。因此，PRRS急性感染时这些肺脏和淋巴组织中PRRSV的滴度最高、组织损伤最为严重。
PRRSV的复制需要PAM或者其他巨噬细胞的成熟或活化。PRRSV在分化的PAM子细胞中复制。与在日龄较大的猪体内复制相比，PRRSV在小猪PAM和PIM中复制后的滴度要高一些。因此，仔猪感染PRRSV后的病变较成年猪更为严重。 PRRSV感染多种组织的巨噬细胞后，造成组织出现显微病变，其炎症的类型和严重程度，取决于毒株、猪的年龄、继发其它细菌或病毒的感染情况。PRRSV造成的组织病变包括间质性肺炎、脑炎、心肌炎、淋巴结病变和动脉炎，全身疾病的严重程度，决定了PRRSV感染的临床表现。PRRSV毒株的毒力越强、猪的日龄越小、存在其它病原混合感染时，临床出现的蓝耳病病征就越严重。
（三）流感病毒等病毒是否有可能启动、协同蓝耳病病毒作用的证据目前还不确切。但应引起畜牧兽医工作者的高度重视，猪蓝耳病流行也有可能需要一种传播快、感染能力强的细菌或病毒的作为载体启动，就不能忽视流感病毒的作用及存在。当然这是否是引起发病的重要因素都有待今后的实践中验证。
二、防制
（一）预防
1．免疫接种
目前，预防和控制PRRS的主要措施是对猪群免疫接种，市场销售的疫苗有灭活苗和弱毒苗两种。到底使用哪种苗，在学术上还处于百家争鸣之中。从实践的结果看，当猪场发生PRRS以后，应用PRRS弱毒活疫苗紧急免疫注射，在短时间内病猪会有明显好转，在1年内免疫接种3次，疫情能控制住。
2．免疫程序
①种公猪用灭活苗接种2次，第一次接种后，间隔20天，用同样疫苗，同样剂量再免一次，其它的猪用弱毒活疫苗接种，其中，妊娠70天以上的母猪暂不接种，待分娩仔猪断奶后再接种。仔猪做常规免疫，3周龄和10周龄各免一次。②人工自然感染产生免疫力是让健康猪自然接触病猪的粪便，死胎，木乃伊胎，弱仔的内脏等，使猪体产生免疫力，抵抗PRRSV的发生。这个方法除PRRS外还适用于细小病毒病，猪断奶后多系统衰弱综合征，传染性胃肠炎，轮状病毒等肠病毒感染以及大肠杆菌感染所致的猪病。具体做法是：每10头后备母猪或新母猪用一个死胎或一个弱仔的内脏打浆，加适量冷水，拌料喂猪，收集分娩当天所有木乃伊和胎盘置于后备母猪或新母猪栏中，让其自然感染。从繁殖母猪群中，每天收集粪便，加水拌料喂猪，每头后备母猪或新母猪每次用粪100—200克，加冷水500毫升，充分混合，拌料喂，配种前1月喂2次，每次连喂1周。
（二）建立健全蓝耳病监测预防体系
在蓝耳病的防控中,应进一步健全疫情监测体系，完善防疫员和疫情报告观察员制度，坚持疫情举报核查制度。继续开展定时定点流行病学调查和监测。要切实做到对监测阳性畜禽及时处置，对监测抗体水平低的及时补免，对监测发现的疫情隐患及时消除。加强生猪疫情高发地区高致病性猪蓝耳病监测。发现不明原因死亡的要及时报告，及时处置。
（三）加强饲养管理
对仔猪的饲养时应注意，仔猪3~4周龄断奶易造成仔猪断奶性应激,而且母源抗体也会消失。仔猪进入保育舍以后如舍内氨气浓度高或仔猪发生营养性应激,都可引起仔猪蓝耳病的发生。预防仔猪高致病性蓝耳病的防控措施有:
1．严把“断奶关”。
仔猪断奶过程中,要尽量避免造成仔猪断奶性应激。如仔猪断奶后1~2 d应饲喂乳猪料,然后在饲喂的乳猪料中逐渐增加干饲料,直至全部饲喂干饲料。
2．过好“保育关”和解决保育仔猪疾病综合症。
保育仔猪主要存在的问题有:仔猪的营养应激;保育舍中的氨气等有害气体的浓度过高,造成氨的慢性中毒以及呼吸道疾病综合症;免疫力下降和圆环病毒感染。所以,针对保育舍仔猪和断奶仔猪蓝耳病的防控,应采取综合性的措施:在饲养制度上,要采取“全进全出制制度”;仔猪23~25 d要接种蓝耳病灭活疫苗,还应及时清除氨气和减少应激。具体措施有:搞好环境卫生、适当的通风、应用理想蛋白技术,减少豆粕的用量,减少氮排放。
3．做好猪舍内温度控制和通风换气工作。
降低饲养密度,避免猪舍过度拥挤,减少热应激,供给充足清洁的饮水;提高饲料营养浓度,满足猪各阶段的营养需要,避免营养问题造成的猪群免疫力低下,还可以在每1 t饲料中加入多种维生素和免疫增强剂、多维电解质等抗应激药物,提高猪群抗应激能力和抗病力,尤其是在炎热的天气或猪群转栏、注射疫苗时,可降低因应激导致猪群抵抗力下降而发病的机会[7]。
（四）做好高疫情监测和掌握疫情动态并严格消毒程序和做好疫情预警预报
各地区要健全疫情监测网络，准确掌握疫情信息，做好疫情发展趋势分析和预测，提高预警预报水平。进一步完善疫情监测和报告制度，做到“早发现、早报告、快反应”，及时控制和扑灭疫情。当前要重点抓好重点地区和已发生疫情地区的病原监测。在经常监测的基础上，对上述地区组织开展集中监测。对发生的每一起疫情，必须及时采集样品进行病原的检测，并保存备份样品，初步诊断为疑似疫情，送样到省级实验室进行确诊。要突出对已发生过疫情地区、养殖密集区的疫情监测。
严格执行“四不一无”制度，即不宰杀、不食用、不出售、不转运和无害化处理病死猪尸体。养猪场（户）要及时通过深埋、焚烧等无害化方法处理死胎、死猪，严格进行圈舍以及场地的消毒，防止疫情扩散蔓延。
当地动物防疫机构接到报告或了解临床怀疑疫情时，应立即派员到现场进行初步调查核实，符合高致病性猪蓝耳病的临床和病理指标的，判定为疑似疫情。判定为疑似疫情时，应采集样品进行实验室诊断，必要时送省级动物疫控机构或国家指定实验室。确认为高致病性猪蓝耳病疫情时，应在2个小时内将疫情逐级上报至省级动物疫控机构和同级兽医行政管理部门。省级兽医行政管理部门和动物疫控机构按有关规定向农业部报告疫情。
各级动物疫控机构按有关规定做好日常监测、流行病学调查及相关风险评估，充分做好疫情预警预报工作。
（五）防控高致病性猪蓝耳病的总体要求和具体措施
1．对高致病性猪蓝耳病疫区的处理必须由当地政府来统一组织执行。由于高致病性猪蓝耳病是一种急性高致死性疫病，传播速度快，死亡率高，仔猪发病率100%，死亡率50%以上，母猪流产率达30%以上，育肥猪也可发病死亡，是一种重要的动物疫病，根据《中华人民共和国动物防疫法》和《重大动物疫情应急条例》等法律规定，发生高致死性疫病时必须由当地政府来统一组织处理。
养殖户不能自行处理病死猪。因为对病死猪处理不当，极易引起病原扩散，会造成更大损失。
2．制和扑灭新发高致病性猪蓝耳病指导原则和具体措施
指导原则：早发现、早报告、早隔离、早监控、早消毒、早扑灭、早免疫。 具体措施：发生疫情后，2个小时内逐级上报疫情至省级兽医行政部门或动物疫控机构；由当地兽医行政部门划定疫点、疫区、受威胁区；扑杀疫点内所有病猪和同群猪，对病死猪、排泄物、污染物、污水染物进行无害化处理，对疫区内被污染的物品、交通工具、用具、猪舍、场地等进行彻底消毒；对疫区和受威胁区的所有生猪用高致病性猪蓝耳病灭活疫苗进行紧急免疫，并加强疫情监控。
三、结束语
通过本文对高致病性猪蓝耳病的病因分析及疾病的发病特点和综合防制措施的阐述，高致病性猪蓝耳病对养猪业虽然危害严重,但并没有想象中的那么不可控，养殖业者完全可以通过试验摸索、同行的相互交流来熟悉它的产生，发展到发生的全过程，在饲养实践中遵循“养重于防、防重于治、养防共举”的综合防制措施。
[二]、论文提纲
一、病因分析及发病特点
（一）病毒感染的引起疫病的发生及特点
（二）继发感染或混合感染等综合因素的发病
（三）应当警惕其他病毒对蓝耳病病毒的协同或启动作用
二、防制
（一）预防
（二）建立健全蓝耳病监测预防体系
（三）加强饲养管理
（四）严格消毒程序
三、结束语
[三]、参考文献
[1]叶国强、李先囡、叶张利.高致病性猪蓝耳病防控措施[J].家禽
业,2010(3):30-31
[2]方小东,胡向东.猪蓝耳病的发生与综合防治[J].现代农业科
技,2009(24):317,319
[3] 吴锦艳，田宏，尚佑军，等．猪生殖与呼吸综合征病毒HN，XT／07株的分离鉴定及其Nap2基因的待性分析[J]．中国兽医科学，2008，38(12)
[4]郭宝清，陈章水，刘文兴，等．从疑似PRRS流产胎儿分离PRRSV的研究[J]．中国预防兽医学报．1996，18(2)：1-4．
[5] 田召芳，李春蕾，吕桂霞.《 蓝耳病与高致病性猪蓝耳病的区别诊断》[J]，畜牧兽医杂志，2009年01期
[6]《中国兽药杂志》编辑部．猪蓝耳病的相关知识[J]．中国兽药杂
志．2008．42(2)：51．
[7] 张银田．我国高致病性猪蓝耳病疫情及防控情况[J]．兽医导刊，2007，119(7)：12—14．
[8] 李凯年，逯德山．高致病性猪蓝耳病流行带来怎样的启示[J]．中国动物保健。2007(7)：21—23．
[9]《高致病性猪蓝耳病免疫技术规范(试行)》 [J]，中国兽药杂志;2007年07期
[10] 张建新，王旭田，司献军．高致病性猪蓝耳病及其防控[J]．中国动物保健．2007(7)：17—20．
[11]李建玲,张书存,朱雪冬.《美国提出用 “猪”字法控制蓝耳病》[J]， 中国畜牧兽医文摘, 2008, (04
高致病性猪蓝耳病的病因及防制方法
[一]、文献综述
猪蓝耳病又称猪繁殖与呼吸综合征（PRRS），是由猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）引起的一种免疫抑制性病，以成年猪生殖障碍、早产、流产和死胎，以及仔猪呼吸异常为特征的传染病[1]。高致病性蓝耳病是由猪繁殖与呼吸综合征病毒变异株引起的一种急性高致病性传染病。仔猪发病率可达100%，死亡率可达50%，母猪流产率可达30%，育肥猪也可发病死亡。
一、病因分析及发病特点
（一）病毒感染的引起疫病的发生及特点
1、病原
属于尼多病毒目动脉炎病毒科。由于以lelystate株为代表的欧洲型毒株和以ATTC-VR-2332株为代表的美洲型毒株在基因组成上和结构蛋白抗原特性上存在明显差异。因此又将PRRSV分为A亚群(欧洲型)和B亚群(美洲型)。
2、流行特点
1.猪和野猪是PRRS唯一的自然感染宿主。 2.本病的发生与气候有关，特别是春秋多风季节。3. PRRSV（蓝耳病病毒）可在猪体内持续潜伏感染，本病一旦发生很难根除。4.PRRSV本身有高度的感染性，可经水平传播与垂直传染多种途径感染猪群。 5.PRRSV不同毒株之间的抗原性不同。尤其在美洲株和欧洲株之间差异更是明显，这对于建立精确的诊断方法和研制有效疫苗已构成很大障碍。
3、临床表现
本病的潜伏期差异较大，最短为3d，最长为37d,自然感染一般为4天。本病临床上可分为急性型、慢性型、亚临诊型等。
急性型
发病母猪主要表现为精神倦怠、食欲减少或废绝、发热，出现不同程度的呼吸困难。妊娠后期(105～107d)，母猪发生流产、早产、死胎、木乃伊胎、弱仔。母猪流产率可达50%～70%，死产率可达35%以上。部分新生仔猪表现为呼吸困难，运动失调及轻瘫等症状，产后1周内死亡率明显增高(40%～80%)。少数母猪表现为产后无乳、胎衣停滞及分泌物增多。1月龄仔猪表现出典型的呼吸道症状，呼吸困难，有时呈腹式呼吸；食欲减退或废绝；体温升高到40℃以上；腹泻；被毛粗乱；共济失调；渐进性消瘦；眼睑水肿；少部分仔猪可见耳部、体表皮肤发紫，躯体末端皮肤发绀。断奶前仔猪死亡率可达80%～100%，断奶后仔猪的增重降低，日增重可下降50%～75%，死亡率升高(10%～25%)。耐过猪生长缓慢，易继发其他疾病。
慢性型
这是目前在规模化猪场PRRS表现的主要形式。主要表现为猪群的生产性能下降，生长缓慢，母猪群繁殖性能下降，猪群免疫功能下降，易继发感染其他细菌性和病毒性疾病。
亚临诊型
感染猪不发病，表现为PRRSV的持续性感染，猪群的血清学抗体阳性，阳性率一般在10%～88%。
剖检变化
病畜剖检时可见心脏、心冠脂肪、心内膜均有出血点，肝脏肿胀，有坏死灶。出血性肺炎和弥漫性间质性肺炎，个别右肺有瘀血。脾脏肿大，有出血点。肾脏肿大出血，肠系膜淋巴结肿。喉头充血，充满填充物，颌下淋巴结肿大出血，切面肿大，胃出血溃疡，回盲口、膀胱出血溃疡。气管黏膜炎症，充满填充物。 诊断
根据临床资料进行诊断比较困难，因为本病易继发其他疾病，给诊断带来很大的困难。在生产的任何阶段，猪群中出现呼吸道症状，发现有繁殖障碍，猪群整体情况不理想，就要考虑PRRS。即使临床症状不明显，或缺少临床症状也不表明猪群中无PRRS病毒，因此还应结合实验室的检查。
4. 猪蓝耳病病毒的病毒特点，缘何容易发生变异
猪蓝耳病病毒为单股正链RNA病毒，在第10次国际病毒大会上将该病毒归属于新设立的动脉炎病毒科、动脉炎病毒属。PRRSV为一种有囊膜的病毒，呈球
形或卵圆形，直径约为45～65nm，呈20面体对称，囊膜表面有较小的纤突，表面相对平滑，核衣壳为立方形，核心直径25～35nm。
作为RNA病毒，PRRSV的基因在合成时容易出现内在性错误，可出现点突变、删除、添加和毒株间基因重组，因此PRRSV的基因容易发生变异，不同分离株之间基因组存在广泛变异。依据血清学及基因序列分析将PRRSV分为两种基本基因型，以LV型为代表的欧洲型和以VR2332为代表的北美洲型，两种的核苷酸序列同源性约为60％。通过序列分析显示，美洲型毒株间的变异明显大于欧洲型毒株间的变异。PRRSV在猪体内持续感染过程中，会出现病毒亚种或亚群。
国外的研究表明，同一基因型的PRRSV分离毒株之间存在明显的序列差异，特别是在基因组ORF1a的nsp1b和nsp2，ORF3和ORF5的变异性很大。我国已发现nsp2的变异主要表现在氨基酸的缺失，此次发现的高致病性猪蓝耳病就是由nsp2缺失30个氨基酸的变异株引起的
5．猪蓝耳病的历史及危害
猪蓝耳病已发现30余年了，最早于1987年在美国的北卡罗来纳州首次爆发。最初人们不能确定其病因，故此一度被称为“神秘病”。1991年荷兰分离到该病的病原“LV”病毒株，欧盟提议将此病命名为“猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）”，1992年国际兽医组织将其定为B类传染病。PRRS病毒分为欧洲型和美洲型两种，分别以1991荷兰分离的LV和1992年美国分离的VR-2332为代表毒株。
1996年郭宝清等专家首次从国内发病猪群中分离出PRRSV，从而证实我国存在本病。此后，该病蔓延至全国各省市，先后有十余省市报道过本病的发生和流行，并且分离和鉴定了猪繁殖与呼吸综合征病毒。目前该病在我国广泛存在，是我国流行的主要猪病之一，主要造成母猪繁殖障碍和大量仔猪死亡，给养猪业造成严重经济损失。
（二）继发感染或混合感染等综合因素的发病及其致病机理
一般猪场发病主要是由蓝耳病病毒感染发病，从而引起动物机体免疫缺失。环境卫生及饲养管理上没能及时跟上，或疫苗使用不当，疫苗的质量不达标等因素造成免疫失败，也可降低机体的抗病力，同已存在饲养环境中的猪瘟病毒、伪狂犬、圆环病毒Ⅱ型、传染性胸膜肺炎及气喘病等以呼吸症状为主传染疫病源的感染而发病。病猪疫病死亡后，从病死猪的实验室诊断和病原微生物的培养、分离均可检出PRRS、伪狂犬、猪瘟、细小病毒、圆环病毒的也存在，同时链球菌、弓形体、附红体、伤寒等细菌和寄生虫的混合感染。而人们易忽略沙门氏菌，往往这种病菌在猪场发生PRRS感染时更容易引起败血症的加重，治疗难度进一步加大。
非典型猪瘟、伪狂犬、链球菌和弓形虫等病原微生物的感染是否启动PRRS而产生协同作用，造成更加严重的疾病流行问题。
PRRSV感染后，首先在局部的易感巨噬细胞中复制，然后迅速向全身淋巴组织和肺扩散，有时也向其他组织扩散。一般说来，临床疾病的发生以及病损程度与病毒最高滴度出现的时间和出现的组织有关，如在染毒后的7-14天，肺脏和淋巴结中的病毒滴度最高。这是因为PRRSV主要在单核细胞分化较好的子细胞中复制，这些分化较好的子细胞具有220kDa的糖蛋白受体，PRRSV与该受体结合然后经过受体介导的内吞作用进入细胞内。因此，PRRS急性感染时这些肺脏和淋巴组织中PRRSV的滴度最高、组织损伤最为严重。
PRRSV的复制需要PAM或者其他巨噬细胞的成熟或活化。PRRSV在分化的PAM子细胞中复制。与在日龄较大的猪体内复制相比，PRRSV在小猪PAM和PIM中复制后的滴度要高一些。因此，仔猪感染PRRSV后的病变较成年猪更为严重。 PRRSV感染多种组织的巨噬细胞后，造成组织出现显微病变，其炎症的类型和严重程度，取决于毒株、猪的年龄、继发其它细菌或病毒的感染情况。PRRSV造成的组织病变包括间质性肺炎、脑炎、心肌炎、淋巴结病变和动脉炎，全身疾病的严重程度，决定了PRRSV感染的临床表现。PRRSV毒株的毒力越强、猪的日龄越小、存在其它病原混合感染时，临床出现的蓝耳病病征就越严重。
（三）流感病毒等病毒是否有可能启动、协同蓝耳病病毒作用的证据目前还不确切。但应引起畜牧兽医工作者的高度重视，猪蓝耳病流行也有可能需要一种传播快、感染能力强的细菌或病毒的作为载体启动，就不能忽视流感病毒的作用及存在。当然这是否是引起发病的重要因素都有待今后的实践中验证。
二、防制
（一）预防
1．免疫接种
目前，预防和控制PRRS的主要措施是对猪群免疫接种，市场销售的疫苗有灭活苗和弱毒苗两种。到底使用哪种苗，在学术上还处于百家争鸣之中。从实践的结果看，当猪场发生PRRS以后，应用PRRS弱毒活疫苗紧急免疫注射，在短时间内病猪会有明显好转，在1年内免疫接种3次，疫情能控制住。
2．免疫程序
①种公猪用灭活苗接种2次，第一次接种后，间隔20天，用同样疫苗，同样剂量再免一次，其它的猪用弱毒活疫苗接种，其中，妊娠70天以上的母猪暂不接种，待分娩仔猪断奶后再接种。仔猪做常规免疫，3周龄和10周龄各免一次。②人工自然感染产生免疫力是让健康猪自然接触病猪的粪便，死胎，木乃伊胎，弱仔的内脏等，使猪体产生免疫力，抵抗PRRSV的发生。这个方法除PRRS外还适用于细小病毒病，猪断奶后多系统衰弱综合征，传染性胃肠炎，轮状病毒等肠病毒感染以及大肠杆菌感染所致的猪病。具体做法是：每10头后备母猪或新母猪用一个死胎或一个弱仔的内脏打浆，加适量冷水，拌料喂猪，收集分娩当天所有木乃伊和胎盘置于后备母猪或新母猪栏中，让其自然感染。从繁殖母猪群中，每天收集粪便，加水拌料喂猪，每头后备母猪或新母猪每次用粪100—200克，加冷水500毫升，充分混合，拌料喂，配种前1月喂2次，每次连喂1周。
（二）建立健全蓝耳病监测预防体系
在蓝耳病的防控中,应进一步健全疫情监测体系，完善防疫员和疫情报告观察员制度，坚持疫情举报核查制度。继续开展定时定点流行病学调查和监测。要切实做到对监测阳性畜禽及时处置，对监测抗体水平低的及时补免，对监测发现的疫情隐患及时消除。加强生猪疫情高发地区高致病性猪蓝耳病监测。发现不明原因死亡的要及时报告，及时处置。
（三）加强饲养管理
对仔猪的饲养时应注意，仔猪3~4周龄断奶易造成仔猪断奶性应激,而且母源抗体也会消失。仔猪进入保育舍以后如舍内氨气浓度高或仔猪发生营养性应激,都可引起仔猪蓝耳病的发生。预防仔猪高致病性蓝耳病的防控措施有:
1．严把“断奶关”。
仔猪断奶过程中,要尽量避免造成仔猪断奶性应激。如仔猪断奶后1~2 d应饲喂乳猪料,然后在饲喂的乳猪料中逐渐增加干饲料,直至全部饲喂干饲料。
2．过好“保育关”和解决保育仔猪疾病综合症。
保育仔猪主要存在的问题有:仔猪的营养应激;保育舍中的氨气等有害气体的浓度过高,造成氨的慢性中毒以及呼吸道疾病综合症;免疫力下降和圆环病毒感染。所以,针对保育舍仔猪和断奶仔猪蓝耳病的防控,应采取综合性的措施:在饲养制度上,要采取“全进全出制制度”;仔猪23~25 d要接种蓝耳病灭活疫苗,还应及时清除氨气和减少应激。具体措施有:搞好环境卫生、适当的通风、应用理想蛋白技术,减少豆粕的用量,减少氮排放。
3．做好猪舍内温度控制和通风换气工作。
降低饲养密度,避免猪舍过度拥挤,减少热应激,供给充足清洁的饮水;提高饲料营养浓度,满足猪各阶段的营养需要,避免营养问题造成的猪群免疫力低下,还可以在每1 t饲料中加入多种维生素和免疫增强剂、多维电解质等抗应激药物,提高猪群抗应激能力和抗病力,尤其是在炎热的天气或猪群转栏、注射疫苗时,可降低因应激导致猪群抵抗力下降而发病的机会[7]。
（四）做好高疫情监测和掌握疫情动态并严格消毒程序和做好疫情预警预报
各地区要健全疫情监测网络，准确掌握疫情信息，做好疫情发展趋势分析和预测，提高预警预报水平。进一步完善疫情监测和报告制度，做到“早发现、早报告、快反应”，及时控制和扑灭疫情。当前要重点抓好重点地区和已发生疫情地区的病原监测。在经常监测的基础上，对上述地区组织开展集中监测。对发生的每一起疫情，必须及时采集样品进行病原的检测，并保存备份样品，初步诊断为疑似疫情，送样到省级实验室进行确诊。要突出对已发生过疫情地区、养殖密集区的疫情监测。
严格执行“四不一无”制度，即不宰杀、不食用、不出售、不转运和无害化处理病死猪尸体。养猪场（户）要及时通过深埋、焚烧等无害化方法处理死胎、死猪，严格进行圈舍以及场地的消毒，防止疫情扩散蔓延。
当地动物防疫机构接到报告或了解临床怀疑疫情时，应立即派员到现场进行初步调查核实，符合高致病性猪蓝耳病的临床和病理指标的，判定为疑似疫情。判定为疑似疫情时，应采集样品进行实验室诊断，必要时送省级动物疫控机构或国家指定实验室。确认为高致病性猪蓝耳病疫情时，应在2个小时内将疫情逐级上报至省级动物疫控机构和同级兽医行政管理部门。省级兽医行政管理部门和动物疫控机构按有关规定向农业部报告疫情。
各级动物疫控机构按有关规定做好日常监测、流行病学调查及相关风险评估，充分做好疫情预警预报工作。
（五）防控高致病性猪蓝耳病的总体要求和具体措施
1．对高致病性猪蓝耳病疫区的处理必须由当地政府来统一组织执行。由于高致病性猪蓝耳病是一种急性高致死性疫病，传播速度快，死亡率高，仔猪发病率100%，死亡率50%以上，母猪流产率达30%以上，育肥猪也可发病死亡，是一种重要的动物疫病，根据《中华人民共和国动物防疫法》和《重大动物疫情应急条例》等法律规定，发生高致死性疫病时必须由当地政府来统一组织处理。
养殖户不能自行处理病死猪。因为对病死猪处理不当，极易引起病原扩散，会造成更大损失。
2．制和扑灭新发高致病性猪蓝耳病指导原则和具体措施
指导原则：早发现、早报告、早隔离、早监控、早消毒、早扑灭、早免疫。 具体措施：发生疫情后，2个小时内逐级上报疫情至省级兽医行政部门或动物疫控机构；由当地兽医行政部门划定疫点、疫区、受威胁区；扑杀疫点内所有病猪和同群猪，对病死猪、排泄物、污染物、污水染物进行无害化处理，对疫区内被污染的物品、交通工具、用具、猪舍、场地等进行彻底消毒；对疫区和受威胁区的所有生猪用高致病性猪蓝耳病灭活疫苗进行紧急免疫，并加强疫情监控。
三、结束语
通过本文对高致病性猪蓝耳病的病因分析及疾病的发病特点和综合防制措施的阐述，高致病性猪蓝耳病对养猪业虽然危害严重,但并没有想象中的那么不可控，养殖业者完全可以通过试验摸索、同行的相互交流来熟悉它的产生，发展到发生的全过程，在饲养实践中遵循“养重于防、防重于治、养防共举”的综合防制措施。
[二]、论文提纲
一、病因分析及发病特点
（一）病毒感染的引起疫病的发生及特点
（二）继发感染或混合感染等综合因素的发病
（三）应当警惕其他病毒对蓝耳病病毒的协同或启动作用
二、防制
（一）预防
（二）建立健全蓝耳病监测预防体系
（三）加强饲养管理
（四）严格消毒程序
三、结束语
[三]、参考文献
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